ฟื้นฟูไมโครไบโอมด้วยสายพันธุ์ที่สูญหายไป – ด้วยโยเกิร์ตจาก L. reuteri, L. gasseri และ B. coagulans - โยเกิร์ตสำหรับ SIBO

อัปเดตเมื่อวันที่ 16 สิงหาคม 2026

สูตร: L. reuteri, L. gasseri และ B. coagulans – ทำโยเกิร์ต SIBO เอง

เหมาะสำหรับผู้ที่แพ้แลคโตสเช่นกัน (ดูหมายเหตุด้านล่าง)

โปรดปฏิบัติตามอุณหภูมิการหมักอย่างเคร่งครัด

อุณหภูมิการหมักที่เหมาะสมสำหรับทั้งสามสายพันธุ์: 41 °C (106 °F)

ส่วนผสม (สำหรับโยเกิร์ตประมาณ 1 ลิตร)

• แคปซูล L. reuteri 4 แคปซูล (แคปซูลละ 5 พันล้าน CFU)
• แคปซูล L. gasseri 1 แคปซูล (แคปซูลละ 12 พันล้าน CFU)
• แคปซูล B. coagulans 2 แคปซูล (แคปซูลละ 4 พันล้าน CFU)
• อินูลิน 1 ช้อนโต๊ะ (หรือ GOS หรือ XOS สำหรับผู้ที่แพ้น้ำตาลฟรุกโตส)
• นมวัวเต็มมันเนยออร์แกนิก 1 ลิตร ไขมัน 3.8% ผ่านการฆ่าเชื้อด้วยอุณหภูมิสูงพิเศษและทำให้เป็นเนื้อเดียวกัน หรือนม UHT
• (ยิ่งนมมีปริมาณไขมันสูง โยเกิร์ตก็จะยิ่งข้น)

หมายเหตุ:

• แคปซูล L. reuteri 1 แคปซูล มีอย่างน้อย 5 × 10⁹ (5 พันล้าน) CFU (en)/KBE (de)
• CFU ย่อมาจาก หน่วยก่อโคโลนี – ในภาษาเยอรมันคือ หน่วยก่อโคโลนี (KBE) หน่วยนี้ระบุจำนวนจุลินทรีย์ที่ยังมีชีวิตอยู่ในผลิตภัณฑ์

หมายเหตุเกี่ยวกับการเลือกนมและอุณหภูมิ

• อย่าใช้นมสด เพราะไม่คงตัวเพียงพอสำหรับการหมักเป็นเวลานาน และไม่ใช่นมปลอดเชื้อ
• นมที่เหมาะที่สุดคือนม H (นมเก็บได้นาน นมยูเอชที): เป็นนมปลอดเชื้อและสามารถใช้ได้ทันที
• นมควรมีอุณหภูมิห้อง – หรืออุ่นเบา ๆ ในอ่างน้ำให้อยู่ที่ 37 °C (99 °F) หลีกเลี่ยงอุณหภูมิที่สูงกว่านี้: ตั้งแต่ประมาณ 44 °C เป็นต้นไป จุลินทรีย์โพรไบโอติกจะเสียหายหรือตาย

อุณหภูมิการหมักที่เหมาะสมสำหรับชุดเริ่มต้นแต่ละชุด

การเตรียม

1. เปิดแคปซูลทั้ง 7 แคปซูล แล้วเทผงลงในชามขนาดเล็ก
2. เติมอินูลิน 1 ช้อนโต๊ะต่อนม 1 ลิตร – อินูลินทำหน้าที่เป็นพรีไบโอติกและช่วยส่งเสริมการเจริญเติบโตของแบคทีเรีย สำหรับผู้ที่แพ้น้ำตาลฟรุกโตส สามารถใช้ GOS หรือ XOS แทนได้
3. เติมนม 2 ช้อนโต๊ะลงในชาม แล้วคนให้ทั่วเพื่อป้องกันไม่ให้จับตัวเป็นก้อน
4. เติมนมที่เหลือ คนให้เข้ากัน
5. เทส่วนผสมลงในภาชนะที่เหมาะสำหรับการหมัก (เช่น แก้ว)
6. ใส่ลงในเครื่องทำโยเกิร์ต ตั้งอุณหภูมิที่ 41 °C (106 °F) และหมักเป็นเวลา 36 ชั่วโมง

ตั้งแต่ชุดที่สองเป็นต้นไป ให้ใช้โยเกิร์ต 2 ช้อนโต๊ะจากชุดก่อนหน้าเป็นหัวเชื้อ

เตรียมชุดแรกด้วยแคปซูลแบคทีเรีย

ตั้งแต่ชุดที่สองเป็นต้นไป ให้ใช้โยเกิร์ต 2 ช้อนโต๊ะจากชุดก่อนหน้าเป็นหัวเชื้อ วิธีนี้ใช้ได้เช่นกันหากชุดแรกยังเหลวหรือยังไม่ข้นแน่นสมบูรณ์ ตราบใดที่โยเกิร์ตมีกลิ่นสดใหม่ มีรสเปรี้ยวอ่อน ๆ และไม่มีสัญญาณการเน่าเสีย (ไม่มีเชื้อรา ไม่มีสีผิดปกติ และไม่มีกลิ่นฉุน)

ต่อนม 1 ลิตร:

• โยเกิร์ต 2 ช้อนโต๊ะจากชุดก่อนหน้า

• อินูลิน 1 ช้อนโต๊ะ

• นม UHT 1 ลิตร หรือนมโฮลมิลค์ที่ผ่านการฆ่าเชื้อด้วยอุณหภูมิสูงพิเศษและทำให้เป็นเนื้อเดียวกัน

วิธีทำ:

1. ใส่โยเกิร์ตจากชุดก่อนหน้า 2 ช้อนโต๊ะลงในชามขนาดเล็ก

2. เติมอินูลิน 1 ช้อนโต๊ะ แล้วคนให้ละลายเนียนกับนม 2 ช้อนโต๊ะจนไม่เหลือก้อน

3. เติมนมที่เหลือ คนให้เข้ากัน

4. เทส่วนผสมลงในภาชนะที่เหมาะสำหรับการหมัก แล้วนำเข้าเครื่องทำโยเกิร์ต

5. หมักที่อุณหภูมิ 41 °C เป็นเวลา 36 ชั่วโมง

หมายเหตุ: อินูลินคืออาหารของเชื้อ เติมอินูลิน 1 ช้อนโต๊ะต่อนม 1 ลิตรสำหรับการทำแต่ละชุด

หากคุณมีคำถาม เรายินดีให้ความช่วยเหลือทางอีเมลที่ team@tramunquiero.com หรือผ่านแบบฟอร์มติดต่อ

ทำไมต้อง 36 ชั่วโมง?

การเลือกใช้ระยะเวลาหมักนี้มีพื้นฐานทางวิทยาศาสตร์: L. reuteri ต้องใช้เวลาประมาณ 3 ชั่วโมงต่อการเพิ่มจำนวนเป็นสองเท่า ภายใน 36 ชั่วโมงจะมีวงจรการเพิ่มจำนวน 12 รอบ ซึ่งสอดคล้องกับการเติบโตแบบทวีคูณและทำให้ผลิตภัณฑ์สำเร็จรูปมีจุลินทรีย์โพรไบโอติกที่ออกฤทธิ์ในความเข้มข้นสูง นอกจากนี้ การบ่มที่นานขึ้นยังช่วยทำให้กรดแลคติกมีความคงตัวและทำให้เชื้อมีความทนทานเป็นพิเศษ

!ข้อควรทราบสำคัญ!

ผู้ใช้หลายคนมักทำชุดแรกไม่สำเร็จ อย่างไรก็ตาม ไม่ควรทิ้ง แต่แนะนำให้เริ่มชุดใหม่โดยใช้โยเกิร์ตจากชุดแรก 2 ช้อนโต๊ะเป็นหัวเชื้อ หากยังไม่สำเร็จ โปรดตรวจสอบอุณหภูมิของเครื่องทำโยเกิร์ต สำหรับเครื่องที่สามารถตั้งอุณหภูมิได้อย่างแม่นยำ ชุดแรกมักจะสำเร็จได้ดี

เคล็ดลับเพื่อผลลัพธ์ที่สมบูรณ์แบบ

• ชุดแรกมักจะยังมีเนื้อเหลวหรือเป็นเม็ดเล็กน้อย ใช้โยเกิร์ตจากชุดก่อนหน้า 2 ช้อนโต๊ะเป็นหัวเชื้อสำหรับรอบถัดไป เมื่อทำชุดใหม่แต่ละรอบ เนื้อสัมผัสจะดีขึ้น
• ไขมันมากขึ้น = เนื้อสัมผัสข้นขึ้น: ยิ่งนมมีปริมาณไขมันสูง โยเกิร์ตก็จะยิ่งมีเนื้อครีมมี่มากขึ้น
• โยเกิร์ตที่ทำเสร็จแล้วเก็บในตู้เย็นได้นานสูงสุด 9 วัน

คำแนะนำในการรับประทาน:

รับประทานโยเกิร์ตประมาณครึ่งถ้วย (ประมาณ 125 มล.) ทุกวัน โดยควรรับประทานเป็นประจำ เหมาะที่สุดในมื้อเช้าหรือเป็นอาหารว่างระหว่างมื้อ วิธีนี้ช่วยให้จุลินทรีย์ที่มีอยู่เติบโตได้อย่างเหมาะสมและช่วยสนับสนุนไมโครไบโอมของคุณอย่างต่อเนื่อง

การเก็บรักษาแคปซูลแบคทีเรีย

เก็บแคปซูลแบคทีเรียไว้ในที่เย็นและแห้ง ควรเก็บไว้ในตู้เย็น

ถุงพลาสติกแบบปิดผนึกซ้ำได้ช่วยปกป้องแคปซูลจากความชื้น จึงเหมาะอย่างยิ่งสำหรับการเก็บรักษาในตู้เย็น

สำหรับข้อมูลเพิ่มเติม โปรดดูคำถามที่พบบ่อยในคำอธิบายสินค้า หรือ คำถามที่พบบ่อย (FAQ) ส่วนในส่วนท้ายของร้านค้าออนไลน์ของเรา

การทำโยเกิร์ตด้วยนมจากพืช – ทางเลือกด้วยกะทิ

หากคุณกำลังพิจารณาใช้นมทางเลือกจากพืชเพื่อทำโยเกิร์ต SIBO เนื่องจากแพ้แลคโตส โปรดทราบว่าโดยปกติแล้วไม่จำเป็น ในระหว่างการหมัก แบคทีเรียโพรไบโอติกจะย่อยแลคโตสส่วนใหญ่ที่มีอยู่ โยเกิร์ตที่ได้จึงมักย่อยและรับประทานได้ดี แม้ในผู้ที่แพ้แลคโตส

อย่างไรก็ตาม ผู้ที่ต้องการหลีกเลี่ยงผลิตภัณฑ์จากนมด้วยเหตุผลด้านจริยธรรม (เช่น ผู้รับประทานวีแกน) หรือเนื่องจากกังวลเรื่องสุขภาพเกี่ยวกับฮอร์โมนในนมจากสัตว์ สามารถเลือกทางเลือกจากพืช เช่น กะทิได้ การทำโยเกิร์ตด้วยนมจากพืชมีความซับซ้อนทางเทคนิคมากกว่า เนื่องจากขาดแหล่งน้ำตาลธรรมชาติ (แลคโตส) ที่แบคทีเรียใช้เป็นแหล่งพลังงาน

ข้อดีและความท้าทาย

ข้อดีของผลิตภัณฑ์จากพืชคือไม่มีฮอร์โมน เช่นเดียวกับที่พบในนมวัว อย่างไรก็ตาม หลายคนรายงานว่าการหมักด้วยนมจากพืชมักไม่ให้ผลที่แน่นอน โดยเฉพาะกะทิมักแยกตัวระหว่างการหมักเป็นชั้นน้ำและส่วนไขมัน ซึ่งอาจส่งผลต่อเนื้อสัมผัสและประสบการณ์ด้านรสชาติ

สูตรที่ใช้เจลาตินหรือเพกทินบางครั้งให้ผลลัพธ์ที่ดีกว่า แต่ยังคงไม่แน่นอน ทางเลือกที่น่าสนใจคือการใช้กัวร์กัม ซึ่งไม่เพียงช่วยให้ได้เนื้อสัมผัสที่เป็นครีมตามต้องการ แต่ยังทำหน้าที่เป็นใยอาหารพรีไบโอติกสำหรับไมโครไบโอมอีกด้วย

สูตร: โยเกิร์ตกะทิผสมกัวร์กัม

ส่วนผสมพื้นฐานนี้ช่วยให้หมักโยเกิร์ตด้วยกะทิได้สำเร็จ และสามารถเริ่มหมักด้วยสายพันธุ์แบคทีเรียที่คุณเลือกได้ เช่น L. reuteri หรือหัวเชื้อจากชุดก่อนหน้า

ส่วนผสม

• กะทิ 1 กระป๋อง (ประมาณ 400 มล.) (ไม่มีสารเติมแต่ง เช่น แซนแทนหรือเจลแลน โดยอนุญาตให้มีกัวร์กัมได้)
• น้ำตาล (ซูโครส) 1 ช้อนโต๊ะ
• แป้งมันฝรั่งดิบ 1 ช้อนโต๊ะ
• กัวร์กัม ¾ ช้อนชา (ห้ามใช้ชนิดไฮโดรไลซ์บางส่วน!)
• หัวเชื้อแบคทีเรียที่คุณเลือก (เช่น เนื้อหาจากแคปซูล L. reuteri ที่มีอย่างน้อย 5 พันล้าน CFU)
  หรือ โยเกิร์ต 2 ช้อนโต๊ะจากชุดก่อนหน้า

การเตรียม

1. การให้ความร้อน
   อุ่นกะทิในหม้อขนาดเล็กด้วยไฟปานกลางจนมีอุณหภูมิประมาณ 82°C (180°F) และรักษาอุณหภูมินี้ไว้ 1 นาที
2. การคนแป้ง
   คนผสมน้ำตาลและแป้งมันฝรั่ง จากนั้นยกลงจากเตา
3. ผสมกัวร์กัม
   หลังจากปล่อยให้เย็นประมาณ 5 นาที ให้คนกัวร์กัมลงไป จากนั้นปั่นด้วยเครื่องปั่นแบบมือถือหรือเครื่องปั่นตั้งโต๊ะอย่างน้อย 1 นาที เพื่อให้ได้เนื้อสัมผัสที่เป็นเนื้อเดียวกันและข้น (คล้ายครีม)
4. ปล่อยให้เย็น
   ปล่อยให้ส่วนผสมเย็นลงจนถึงอุณหภูมิห้อง
5. เติมแบคทีเรีย
   ค่อย ๆ คนหัวเชื้อโพรไบโอติกให้เข้ากัน (ห้ามปั่น)
6. การหมัก
   เทส่วนผสมลงในภาชนะแก้ว แล้วหมักเป็นเวลา 48 ชั่วโมงที่อุณหภูมิประมาณ 37°C (99°F)

ทำไมต้องใช้กัวร์กัม?

กัวร์กัมเป็นใยอาหารธรรมชาติที่ได้จากเมล็ดกัวร์ โดยส่วนใหญ่ประกอบด้วยโมเลกุลน้ำตาลกาแลกโทสและแมนโนส (กาแลกโตแมนแนน) และทำหน้าที่เป็นใยอาหารพรีไบโอติกที่แบคทีเรียที่มีประโยชน์ในลำไส้หมักได้ เช่น เปลี่ยนเป็นกรดไขมันสายสั้นอย่างบิวทิเรตและโพรพิโอเนต

ประโยชน์ของกัวร์กัม:

• ช่วยให้ส่วนผสมโยเกิร์ตคงตัว: ป้องกันการแยกตัวของไขมันและน้ำ
• ผลพรีไบโอติก: ส่งเสริมการเจริญเติบโตของสายพันธุ์แบคทีเรียที่มีประโยชน์ เช่น Bifidobacterium, Ruminococcus และ Clostridium butyricum
• สมดุลไมโครไบโอมที่ดีขึ้น: ช่วยผู้ที่มีภาวะลำไส้แปรปรวนหรืออุจจาระเหลว
• การเพิ่มประสิทธิภาพของยาปฏิชีวนะ: การศึกษาพบว่าอัตราความสำเร็จในการรักษา SIBO (ภาวะแบคทีเรียเจริญเติบโตมากเกินไปในลำไส้เล็ก) สูงขึ้น 25%

สำคัญ: ห้ามใช้กัวร์กัมชนิดที่ผ่านการย่อยบางส่วน – ชนิดนี้ไม่มีคุณสมบัติสร้างเจลและไม่เหมาะสำหรับทำโยเกิร์ต

เหตุผลที่เราแนะนำให้ใช้ 3–4 แคปซูลต่อชุด

สำหรับการหมักครั้งแรกด้วย Limosilactobacillus reuteri เราแนะนำให้ใช้ 3 ถึง 4 แคปซูล (15 ถึง 20 พันล้าน CFU) ต่อชุด

ปริมาณนี้อ้างอิงจากคำแนะนำของ Dr. William Davis ซึ่งระบุในหนังสือ “Super Gut” (2022) ว่าจำเป็นต้องใช้ปริมาณเริ่มต้นอย่างน้อย 5 พันล้านหน่วยก่อโคโลนี (CFU) เพื่อให้การหมักสำเร็จ ปริมาณเริ่มต้นที่สูงกว่า ประมาณ 15 ถึง 20 พันล้าน CFU ให้ผลอย่างมีประสิทธิภาพเป็นพิเศษ

ข้อมูลเบื้องหลัง: L. reuteri จะเพิ่มจำนวนเป็นสองเท่าประมาณทุก 3 ชั่วโมงภายใต้สภาวะที่เหมาะสม ในช่วงเวลาการหมักทั่วไป 36 ชั่วโมง จะเกิดการเพิ่มจำนวนเป็นสองเท่าประมาณ 12 ครั้ง ซึ่งหมายความว่า ในทางทฤษฎี ปริมาณเริ่มต้นที่ค่อนข้างน้อยก็อาจเพียงพอที่จะผลิตแบคทีเรียจำนวนมากได้

อย่างไรก็ตาม ในทางปฏิบัติ การใช้ปริมาณเริ่มต้นสูงถือว่าเหมาะสมด้วยเหตุผลหลายประการ ประการแรก ช่วยเพิ่มโอกาสที่ L. reuteri จะตั้งตัวได้อย่างรวดเร็วและเป็นสายพันธุ์เด่นเมื่อเทียบกับเชื้อแปลกปลอมที่อาจมีอยู่ ประการที่สอง ความเข้มข้นเริ่มต้นสูงช่วยให้ค่า pH ลดลงอย่างสม่ำเสมอ ซึ่งทำให้สภาวะการหมักตามแบบฉบับมีเสถียรภาพ ประการที่สาม ความหนาแน่นเริ่มต้นที่ต่ำเกินไปอาจทำให้การหมักเริ่มล่าช้าหรือการเจริญเติบโตไม่เพียงพอ

ดังนั้น เราแนะนำให้ใช้ 3 ถึง 4 แคปซูลสำหรับชุดแรก เพื่อให้มั่นใจว่าโยเกิร์ตจะเริ่มเพาะได้อย่างน่าเชื่อถือ หลังจากการหมักครั้งแรกสำเร็จ โดยทั่วไปสามารถใช้โยเกิร์ตนั้นเพาะต่อได้ถึง 20 ครั้ง ก่อนที่จะแนะนำให้ใช้หัวเชื้อใหม่

เริ่มใหม่หลังการหมัก 20 ครั้ง

คำถามที่พบบ่อยในการหมักด้วย Limosilactobacillus reuteri คือ: คุณสามารถนำหัวเชื้อโยเกิร์ตกลับมาใช้ซ้ำได้กี่ครั้งก่อนที่จะต้องใช้หัวเชื้อใหม่? Dr. William Davis แนะนำในหนังสือ Super Gut (2022) ว่าไม่ควรเพาะโยเกิร์ต Reuteri หมักต่อเนื่องเกิน 20 รุ่น (หรือชุด) แต่ตัวเลขนี้มีหลักฐานทางวิทยาศาสตร์รองรับหรือไม่? และเหตุใดจึงต้องเป็น 20 โดยเฉพาะ – ไม่ใช่ 10 หรือ 50?

เกิดอะไรขึ้นระหว่างการถ่ายเชื้อซ้ำ?

เมื่อคุณทำโยเกิร์ต Reuteri แล้ว คุณสามารถใช้โยเกิร์ตนั้นเป็นหัวเชื้อสำหรับชุดถัดไปได้ วิธีนี้เป็นการถ่ายโอนแบคทีเรียมีชีวิตจากผลิตภัณฑ์สำเร็จรูปลงในสารละลายสารอาหารใหม่ (เช่น นม หรือนมจากพืช) ช่วยประหยัดทรัพยากร ประหยัดแคปซูล และมักมีการใช้งานจริง

อย่างไรก็ตาม การถ่ายเชื้อซ้ำอย่างต่อเนื่องนำไปสู่ปัญหาทางชีววิทยา:
การเปลี่ยนแปลงของจุลินทรีย์

การเปลี่ยนแปลงของจุลินทรีย์ – วัฒนธรรมเปลี่ยนแปลงอย่างไร

ในการถ่ายเชื้อแต่ละครั้ง องค์ประกอบและคุณสมบัติของเพาะเลี้ยงแบคทีเรียอาจเปลี่ยนแปลงไปทีละน้อย สาเหตุของการเปลี่ยนแปลงนี้ ได้แก่:

• การกลายพันธุ์แบบฉับพลันระหว่างการแบ่งเซลล์ (โดยเฉพาะเมื่อมีการหมุนเวียนสูงในสภาพแวดล้อมที่อบอุ่น)
• การคัดเลือกประชากรย่อยบางกลุ่ม (เช่น แบคทีเรียที่เจริญเติบโตเร็วกว่าเข้ามาแทนที่แบคทีเรียที่เติบโตช้ากว่า)
• การปนเปื้อนจากจุลินทรีย์ที่ไม่พึงประสงค์จากสิ่งแวดล้อม (เช่น เชื้อโรคในอากาศหรือจุลินทรีย์ในครัว)
• การปรับตัวที่เกี่ยวข้องกับสารอาหาร (แบคทีเรีย “ปรับตัว” ให้เข้ากับนมจากสัตว์แต่ละชนิดและเปลี่ยนแปลงกระบวนการเผาผลาญ)

ผลลัพธ์คือ: หลังจากผ่านไปหลายรุ่น จะไม่สามารถรับประกันได้อีกต่อไปว่าในโยเกิร์ตยังมีแบคทีเรียชนิดเดียวกัน หรืออย่างน้อยก็ยังมีสายพันธุ์ย่อยที่มีคุณสมบัติทางสรีรวิทยาเหมือนเดิมเช่นเดียวกับตอนเริ่มต้น

เหตุผลที่ ดร. Davis แนะนำ 20 รุ่น

เดิมที ดร. William Davis พัฒนาวิธีทำโยเกิร์ต L. reuteri สำหรับผู้อ่านของเขาโดยเฉพาะ เพื่อใช้ประโยชน์ต่อสุขภาพบางประการ (เช่น การหลั่งออกซิโทซิน การนอนหลับที่ดีขึ้น และการปรับปรุงสภาพผิว) ในบริบทนี้ เขาเขียนว่าวิธีการดังกล่าว “ใช้ได้อย่างสม่ำเสมอประมาณ 20 รุ่น” ก่อนที่จะควรใช้เชื้อเพาะเลี้ยงตั้งต้นใหม่จากแคปซูล (Davis, 2022)

ข้อความนี้ไม่ได้อ้างอิงจากการทดสอบในห้องปฏิบัติการอย่างเป็นระบบ แต่จากประสบการณ์จริงด้านการหมักและรายงานจากชุมชนของเขา

“หลังจากนำกลับมาใช้ใหม่ประมาณ 20 รุ่น โยเกิร์ตของคุณอาจสูญเสียความเข้มข้นหรือหมักได้ไม่สม่ำเสมอ เมื่อถึงจุดนั้น ให้ใช้แคปซูลใหม่อีกครั้งเป็นหัวเชื้อ”
— Super Gut, ดร. William Davis, 2022

เขาให้เหตุผลเกี่ยวกับตัวเลขนี้ในเชิงปฏิบัติว่า หลังจากเพาะเลี้ยงซ้ำประมาณ 20 ครั้ง ความเสี่ยงที่การเปลี่ยนแปลงที่ไม่พึงประสงค์จะเริ่มสังเกตเห็นได้จะเพิ่มขึ้น เช่น เนื้อสัมผัสเหลวลง กลิ่นเปลี่ยนไป หรือผลดีต่อสุขภาพลดลง

มีการศึกษาทางวิทยาศาสตร์เกี่ยวกับเรื่องนี้หรือไม่?

ขณะนี้ยังไม่มีการศึกษาทางวิทยาศาสตร์โดยเฉพาะเกี่ยวกับโยเกิร์ต L. reuteri ที่ผ่านรอบการหมักมากกว่า 20 รอบ อย่างไรก็ตาม มีงานวิจัยเกี่ยวกับความคงตัวของแบคทีเรียกรดแลกติกเมื่อเพาะเลี้ยงต่อเนื่องหลายครั้ง:

• ในจุลชีววิทยาด้านอาหาร เป็นที่ยอมรับโดยทั่วไปว่าการเปลี่ยนแปลงทางพันธุกรรมอาจเกิดขึ้นหลังผ่านไป 5–30 รุ่น โดยขึ้นอยู่กับสายพันธุ์ อุณหภูมิ อาหารเลี้ยงเชื้อ และสุขอนามัย (Giraffa et al., 2008)
• การศึกษาการหมักด้วย Lactobacillus delbrueckii และ Streptococcus thermophilus แสดงให้เห็นว่า หลังผ่านไปประมาณ 10–25 รุ่น อาจเกิดการเปลี่ยนแปลงในประสิทธิภาพการหมัก (เช่น ความเป็นกรดลดลง หรือกลิ่นเปลี่ยนไป) (O’Sullivan et al., 2002)
• สำหรับ Lactobacillus reuteri โดยเฉพาะ เป็นที่ทราบกันว่าคุณสมบัติโพรไบโอติกของแบคทีเรียชนิดนี้อาจแตกต่างกันอย่างมาก ขึ้นอยู่กับชนิดย่อย ไอโซเลต และสภาวะแวดล้อม (Walter et al., 2011)

ข้อมูลเหล่านี้ชี้ว่า: 20 รุ่นเป็นแนวทางที่รอบคอบและสมเหตุสมผลในการรักษาความสมบูรณ์ของเชื้อเพาะเลี้ยง โดยเฉพาะหากคุณต้องการคงไว้ซึ่งผลดีต่อสุขภาพ (เช่น การผลิตออกซิโทซิน)

สรุป: 20 รุ่นเป็นจุดประนีประนอมในทางปฏิบัติ

ยังไม่สามารถระบุได้อย่างแน่ชัดทางวิทยาศาสตร์ว่า 20 คือ “ตัวเลขมหัศจรรย์” หรือไม่ แต่:

• โดยปกติแล้ว ไม่จำเป็นต้องทิ้งการเพาะเลี้ยงก่อนครบ 10 รอบ
• การเพาะเลี้ยงต่อเนื่องเกิน 30 รอบเพิ่มความเสี่ยงต่อการกลายพันธุ์หรือการปนเปื้อน
• 20 รอบการเพาะเลี้ยงเทียบเท่ากับการใช้งานประมาณ 5–10 เดือน (ขึ้นอยู่กับปริมาณการบริโภค) ซึ่งเป็นช่วงเวลาที่เหมาะสมสำหรับการเริ่มต้นใหม่

คำแนะนำสำหรับการปฏิบัติ:

หลังจากทำโยเกิร์ตครบสูงสุด 20 รอบ ควรใช้แนวทางใหม่โดยเริ่มจากหัวเชื้อสดจากแคปซูล โดยเฉพาะหากต้องการใช้ L. reuteri เป็น “สายพันธุ์ที่สูญหาย” สำหรับไมโครไบโอมโดยเฉพาะ

วิธีหมัก L. reuteri ในน้ำผลไม้:

น้ำผลไม้โพรไบโอติกเป็นทางเลือกแทนโยเกิร์ต L. reuteri

L. reuteri ไม่จำเป็นต้องหมักในนมเสมอไป

น้ำผลไม้ยังสามารถเป็นตัวกลางการหมักจากพืชสำหรับแบคทีเรียโพรไบโอติกได้อีกด้วย

งานวิจัยทางวิทยาศาสตร์แสดงให้เห็นว่า L. reuteri สามารถใช้กับน้ำผลไม้หลากหลายชนิด รวมถึงน้ำแอปเปิล น้ำส้ม น้ำสับปะรด และน้ำมะม่วง

นี่เป็นทางเลือกที่น่าสนใจสำหรับ โยเกิร์ต L. reuteri แบบดั้งเดิมของเรา โดยเฉพาะสำหรับผู้ที่สนใจการหมักโพรไบโอติกที่ปราศจากผลิตภัณฑ์นม

น้ำผลไม้โพรไบโอติกเหมือนคอมบูชาหรือไม่?

ไม่ใช่

แม้เครื่องดื่มทั้งสองชนิดจะผลิตด้วยกระบวนการหมัก แต่ น้ำผลไม้หมักด้วย L. reuteri ไม่ใช่คอมบูชา

โดยทั่วไปคอมบูชาหมักด้วยเชื้อผสมระหว่างแบคทีเรียและยีสต์

สำหรับน้ำผลไม้โพรไบโอติก L. reuteri จะมีการเติม L. reuteri ลงไปโดยตั้งใจในฐานะหัวเชื้อแบคทีเรีย

อย่างไรก็ตาม หลักการพื้นฐานคล้ายกัน:

จุลินทรีย์จะเปลี่ยนองค์ประกอบของน้ำผลไม้ด้วยเมแทบอลิซึมและเปลี่ยนแปลงผลิตภัณฑ์ดั้งเดิมระหว่างการหมัก

L. reuteri สามารถเปลี่ยนน้ำตาลในน้ำผลไม้ได้หรือไม่?

L. reuteri อยู่ในกลุ่มแบคทีเรียกรดแลกติกและสามารถเปลี่ยนคาร์โบไฮเดรตได้

น้ำผลไม้มีน้ำตาลตามธรรมชาติ ซึ่งสามารถทำหน้าที่เป็นสารตั้งต้นสำหรับเมแทบอลิซึมของแบคทีเรียระหว่างการหมัก

งานวิจัยเกี่ยวกับการหมักน้ำผลไม้ด้วยแบคทีเรียกรดแลกติกแสดงให้เห็นว่าหลักการนี้ใช้ได้จริง

ระหว่างการหมักอาจเกิดกรดอินทรีย์และเมแทบอไลต์อื่น ๆ ซึ่งเปลี่ยนแปลงรสชาติ กลิ่น และองค์ประกอบของน้ำผลไม้ดั้งเดิม

น้ำผลไม้ชนิดใดบ้างที่มีการศึกษาร่วมกับ L. reuteri?

น้ำแอปเปิล

น้ำแอปเปิลมีความน่าสนใจเป็นพิเศษสำหรับการหมักด้วย L. reuteri

ในการศึกษาทางวิทยาศาสตร์ฉบับหนึ่ง น้ำแอปเปิลถูกหมักด้วย L. reuteri และวิเคราะห์หลังจาก 0, 6, 12, 18, 24 และ 30 ชั่วโมง

ภายใต้สภาวะที่ศึกษา ระยะเวลาการหมักที่เหมาะสมที่สุดอยู่ที่ประมาณ 18 ชั่วโมง

การหมักส่งผลต่อองค์ประกอบของสารให้กลิ่นรส กรดอินทรีย์ และโพลีฟีนอลในน้ำแอปเปิล รวมถึงองค์ประกอบอื่น ๆ

การศึกษาอีกฉบับแสดงให้เห็นเช่นกันว่า L. reuteri ยังคงมีชีวิตอยู่ได้ในน้ำแอปเปิล

น้ำส้ม

มีการศึกษาน้ำส้มในฐานะตัวกลางสำหรับ L. reuteri เช่นกัน

งานวิจัยแสดงให้เห็นว่า L. reuteri ยังคงมีชีวิตอยู่ได้ในน้ำส้ม จึงทำให้น้ำส้มเป็นวัตถุดิบที่อาจน่าสนใจอีกชนิดหนึ่งสำหรับเครื่องดื่มโพรไบโอติก

น้ำสับปะรด

เช่นเดียวกันกับน้ำสับปะรด

มีการแสดงให้เห็นเช่นกันว่า L. reuteri ยังคงมีชีวิตอยู่ได้ในน้ำสับปะรด

น้ำมะม่วง

มีการศึกษาทางวิทยาศาสตร์เกี่ยวกับการหมักน้ำมะม่วงด้วย L. reuteri โดยเฉพาะเช่นกัน

ระหว่างการหมัก นักวิจัยสังเกตเห็นการเปลี่ยนแปลงของปริมาณน้ำตาลและโปรไฟล์ทางเมแทบอลิซึมของน้ำผลไม้

ผลการค้นพบเหล่านี้เป็นหลักฐานเพิ่มเติมว่าน้ำผลไม้สามารถใช้เป็นตัวกลางสำหรับการหมัก L. reuteri ได้

เหตุใดระยะเวลาหมักจึงสำคัญ

หากคุณเตรียมของเรา หากคุณทำโยเกิร์ต L. reuteri อยู่แล้ว คุณย่อมทราบดีว่าอุณหภูมิคงที่และระยะเวลาหมักที่เหมาะสมมีความสำคัญเพียงใด

หลักการพื้นฐานเดียวกันนี้ใช้กับน้ำผลไม้ได้ แม้ว่าเงื่อนไขที่เหมาะสมที่สุดอาจแตกต่างจากที่ใช้กับโยเกิร์ต

เรื่องนี้เห็นได้อย่างชัดเจนเป็นพิเศษจากการศึกษาน้ำแอปเปิล

นักวิจัยวิเคราะห์น้ำแอปเปิลหมักด้วย L. reuteri หลังผ่านการหมัก 0, 6, 12, 18, 24 และ 30 ชั่วโมง

ภายใต้เงื่อนไขที่ศึกษา พบว่าการหมักประมาณ 18 ชั่วโมงเป็นระยะเวลาที่เหมาะสมที่สุด

ข้อนี้แสดงให้เห็นหลักการสำคัญ:

การหมักนานขึ้นไม่ได้หมายความว่าจะหมักได้ดีขึ้นโดยอัตโนมัติ

ระยะเวลาหมักที่เหมาะสมที่สุดขึ้นอยู่กับแบคทีเรีย ตัวกลางการหมัก อุณหภูมิ ค่า pH และเงื่อนไขอื่น ๆ

วัฒนธรรม L. reuteri ที่แตกต่างกันอาจมีพฤติกรรมแตกต่างกันบ้างเช่นกัน ดังนั้นระยะเวลาหมักประมาณ 18 ชั่วโมงจึงควรถือเป็น จุดเริ่มต้นที่ผ่านการศึกษาทางวิทยาศาสตร์ มากกว่าจะเป็นค่าที่รับประกันว่าเหมาะสมที่สุดในทุกสภาวะที่เป็นไปได้

วิธีทำน้ำแอปเปิลหมักด้วย L. reuteri

สูตรต่อไปนี้นำผลการศึกษาทางวิทยาศาสตร์ที่มีอยู่เกี่ยวกับ L. reuteri และการหมักน้ำผลไม้มาแปลงเป็นวิธีง่าย ๆ สำหรับทดลองทำที่บ้าน

ส่วนผสมและอุปกรณ์สำหรับ 1 ลิตร

• น้ำแอปเปิลพาสเจอร์ไรซ์ 100% ปริมาตร 1 ลิตร (ประมาณ 34 fl oz)

• แคปซูล L. reuteri 1 แคปซูล ซึ่งมี 5 พันล้าน CFU

• ภาชนะหมักที่สะอาดและมีพื้นที่ว่างด้านบนเพียงพอ

• แอร์ล็อกสำหรับการหมัก

• เครื่องทำโยเกิร์ตหรืออุปกรณ์อื่นที่สามารถรักษาอุณหภูมิประมาณ 37°C / 99°F ได้

การเลือกน้ำแอปเปิลที่เหมาะสม

ใช้น้ำแอปเปิลพาสเจอร์ไรซ์ 100% ที่ไม่มีสารกันเสีย

ตรวจสอบรายการส่วนผสมทุกครั้งก่อนซื้อน้ำผลไม้

โดยเฉพาะอย่างยิ่ง ควร ไม่มีโพแทสเซียมซอร์เบตหรือโซเดียมเบนโซเอต

ดร. วิลเลียม เดวิสแนะนำโดยเฉพาะให้ใช้น้ำผลไม้ที่ไม่มีสารกันเสียสำหรับการหมักน้ำผลไม้ และระบุอย่างชัดเจนให้หลีกเลี่ยงโพแทสเซียมซอร์เบตและโซเดียมเบนโซเอต

เรื่องนี้สมเหตุสมผลในทางจุลชีววิทยา:

มีการเติมสารกันเสียลงในอาหารโดยเฉพาะเพื่อยับยั้งการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์

อย่างไรก็ตาม ระหว่างการหมัก เราต้องการสิ่งที่ตรงกันข้าม นั่นคือ ต้องการให้แบคทีเรียที่เติมลงไปยังคงทำงานทางเมแทบอลิซึมและเพิ่มจำนวน

ขั้นตอนที่ 1: เตรียมน้ำแอปเปิล

เปิดภาชนะน้ำแอปเปิลพาสเจอร์ไรซ์ใหม่ แล้วเท 1 ลิตร ลงในภาชนะหมักที่ทำความสะอาดอย่างทั่วถึง

เว้นพื้นที่ว่างด้านบนของภาชนะให้เพียงพอ

ขั้นตอนที่ 2: เติม L. reuteri

เปิดแคปซูล L. reuteri 1 แคปซูล ซึ่งมี 5 พันล้าน CFU แล้วเติมส่วนผสมทั้งหมดลงในน้ำแอปเปิล 1 ลิตร

คนให้เข้ากันอย่างทั่วถึง เพื่อกระจายหัวเชื้อให้ทั่วน้ำแอปเปิล

ซึ่งทำให้ได้ความเข้มข้นเริ่มต้นประมาณ 5 ล้าน CFU ต่อมิลลิลิตรของน้ำแอปเปิล

ขั้นตอนที่ 3: ใช้แอร์ล็อกสำหรับการหมัก

ห้ามหมักน้ำผลไม้ในภาชนะสุญญากาศหรือภาชนะที่ปิดสนิทโดยเด็ดขาด

ก๊าซอาจเกิดขึ้นระหว่างการหมัก ซึ่งอาจทำให้เกิดแรงดันสูงภายในภาชนะที่ปิดสนิท

ใช้แอร์ล็อกสำหรับการหมักที่ช่วยให้ก๊าซจากการหมักระบายออกได้ พร้อมช่วยปกป้องสิ่งหมักจากการปนเปื้อนของสภาพแวดล้อมโดยรอบ

หลักการนี้ยังคุ้นเคยจากวิธีการหมักอื่น ๆ รวมถึงคอมบูชาและเครื่องดื่มหมักชนิดอื่น

ขั้นตอนที่ 4: หมักที่อุณหภูมิประมาณ 37°C / 99°F

โดยทั่วไป L. reuteri เพาะเลี้ยงที่อุณหภูมิประมาณอุณหภูมิร่างกาย

ในทางปฏิบัติ ให้เริ่มต้นด้วยการรักษาน้ำแอปเปิลไว้ที่อุณหภูมิประมาณ 37°C / 99°F ตลอดการหมัก

การรักษาอุณหภูมิให้คงที่มากที่สุดเท่าที่จะทำได้เป็นสิ่งสำคัญ

ขั้นตอนที่ 5: หมักประมาณ 18 ชั่วโมง

สำหรับน้ำแอปเปิล ให้เริ่มต้นด้วยการหมักประมาณ 18 ชั่วโมง

คำแนะนำนี้อ้างอิงจากการวิจัยทางวิทยาศาสตร์ที่วิเคราะห์น้ำแอปเปิลซึ่งหมักด้วย L. reuteri หลังผ่านไป 0, 6, 12, 18, 24 และ 30 ชั่วโมง

ภายใต้สภาวะที่ศึกษา พบว่า ระยะเวลาการหมักที่เหมาะสมที่สุดคือประมาณ 18 ชั่วโมง

อย่างไรก็ตาม ไม่ควรถือว่า 18 ชั่วโมงเป็นระยะเวลาที่เหมาะสมที่สุดซึ่งรับประกันได้สำหรับวัฒนธรรม L. reuteri ทุกชนิด

การหมักเกี่ยวข้องกับจุลินทรีย์ที่มีชีวิต และผลลัพธ์อาจแตกต่างกันไปตามวัฒนธรรมแบคทีเรีย น้ำผลไม้ จำนวนแบคทีเรียเริ่มต้น ค่า pH และสภาวะการหมัก

ขั้นตอนที่ 6: หยุดการหมักด้วยการแช่เย็น

เมื่อการหมักเสร็จสมบูรณ์ ให้นำน้ำผลไม้ใส่ตู้เย็นทันที

การลดอุณหภูมิลงอย่างมากจะชะลอกิจกรรมทางเมแทบอลิซึมของแบคทีเรียลงอย่างมาก และจึงช่วยชะลอการหมักต่อไป

เก็บน้ำผลไม้โพรไบโอติกที่เสร็จแล้วไว้ในตู้เย็น

คุณจำเป็นต้องใช้อินูลินหรือใยอะคาเซียหรือไม่?

ไม่จำเป็นเสมอไป

น้ำผลไม้มีน้ำตาลที่เกิดขึ้นตามธรรมชาติในปริมาณมากอยู่แล้ว ซึ่งสามารถใช้เป็นสารตั้งต้นสำหรับเมแทบอลิซึมของแบคทีเรียได้ ต่างจากนม

การวิจัยเกี่ยวกับการหมักน้ำผลไม้ด้วย L. reuteri แสดงให้เห็นว่าการหมักสามารถเกิดขึ้นได้โดยไม่ต้องเติมอินูลินที่มักใช้ในการเตรียมโยเกิร์ต L. reuteri ของเรา

การเติมใยอาหารพรีไบโอติก เช่น อินูลินหรือใยอะคาเซีย จะช่วยปรับปรุงการหมักสำหรับวัฒนธรรม L. reuteri บางชนิดได้มากขึ้นหรือไม่ เป็นอีกคำถามหนึ่งและจำเป็นต้องมีการศึกษาเพิ่มเติม

เหตุใดผลลัพธ์ของการหมักจึงแตกต่างกันได้?

L. reuteri เป็นจุลินทรีย์ที่มีชีวิต

ความสำเร็จของการหมักขึ้นอยู่กับหลายปัจจัย รวมถึงอุณหภูมิ ระยะเวลาการหมัก ความเข้มข้นเริ่มต้นของแบคทีเรีย ค่า pH และองค์ประกอบของน้ำผลไม้

วัฒนธรรม L. reuteri แต่ละชนิดอาจมีลักษณะทางเมแทบอลิซึมแตกต่างกันได้เช่นกัน

อย่างไรก็ตาม การวิจัยทางวิทยาศาสตร์แสดงให้เห็นถึงหลักการพื้นฐานว่า น้ำผลไม้สามารถเป็นสื่อที่เหมาะสมสำหรับ L. reuteri และ L. reuteri สามารถยังคงมีชีวิตอยู่หรือหมักน้ำผลไม้ได้อย่างแข็งขันภายใต้สภาวะที่เหมาะสม

น้ำ L. reuteri หรือโยเกิร์ต L. reuteri?

โยเกิร์ต L. reuteri ของเรายังคงเป็นวิธีการเตรียมที่ใช้กันเป็นหลัก ซึ่งมีคำแนะนำการหมักที่มีอยู่ของเราครอบคลุมไว้แล้ว

การหมักน้ำผลไม้เป็นทางเลือกเพิ่มเติมที่น่าสนใจ โดยเฉพาะสำหรับผู้ที่สนใจการหมักจากพืชหรือการหมักที่ปราศจากผลิตภัณฑ์จากนม

งานวิจัยแสดงให้เห็นมากขึ้นว่า L. reuteri ไม่ได้จำกัดอยู่แค่การหมักแบบโยเกิร์ตเท่านั้น น้ำผลไม้ เช่น น้ำแอปเปิล ก็สามารถใช้เป็นสื่อสำหรับการหมัก L. reuteri ได้เช่นกัน

สิ่งนี้ทำให้น้ำโพรไบโอติกเป็นวิธีใหม่ที่น่าสนใจในการสำรวจการหมัก L. reuteri

หมายเหตุเกี่ยวกับการยอมรับ:

น้ำผลไม้หมักอาจทนต่อได้ยากกว่าโยเกิร์ต L. reuteri โดยเฉพาะสำหรับผู้ที่ไวต่อฟรุกโตส กรดผลไม้ อาหารหมัก หรือ FODMAP

การหมักไม่ได้กำจัดน้ำตาลที่มีอยู่ตามธรรมชาติในน้ำผลไม้ออกไปทั้งหมดเสมอไป

หากคุณกำลังลองน้ำโพรไบโอติกเป็นครั้งแรก ให้เริ่มจากปริมาณเล็กน้อยและประเมินว่าร่างกายของคุณยอมรับได้ดีเพียงใด

ประโยชน์ของโยเกิร์ต SIBO ในแต่ละวัน

ฟื้นฟูไมโครไบโอมด้วยสายพันธุ์ที่สูญหายไป ด้วยโยเกิร์ตจาก L. reuteri, L. gasseri และ B. coagulans

ไมโครไบโอมมีบทบาทสำคัญต่อสุขภาพของเรา ไม่เพียงส่งผลต่อการย่อยอาหาร แต่ยังมีอิทธิพลต่อระบบภูมิคุ้มกันและระบบประสาทลำไส้ ซึ่งเชื่อมโยงอย่างใกล้ชิดกับสมอง (Foster et al., 2017) ความสมดุลของการตั้งถิ่นฐานของจุลินทรีย์ที่ถูกรบกวน โดยเฉพาะในลำไส้เล็ก อาจนำไปสู่อาการผิดปกติได้อย่างกว้างขวาง

ระบบประสาทลำไส้ (ENS) ซึ่งมักเรียกว่า “สมองที่สองของลำไส้” เป็นระบบประสาทอิสระในทางเดินอาหาร ประกอบด้วยเซลล์ประสาทมากกว่า 100 ล้านเซลล์ที่ทอดยาวไปตามผนังลำไส้ทั้งหมด มากกว่าในไขสันหลัง ENS ควบคุมกระบวนการสำคัญหลายอย่างได้อย่างอิสระ ได้แก่ ควบคุมการเคลื่อนไหวของลำไส้ (เพอริสตัลซิส) การหลั่งน้ำย่อย การไหลเวียนเลือดไปยังเยื่อเมือก และยังประสานงานการป้องกันของระบบภูมิคุ้มกันบางส่วนในลำไส้ด้วย (Furness, 2012)

แม้จะทำงานได้อย่างเป็นอิสระ แต่สมองในลำไส้มีความเชื่อมโยงอย่างใกล้ชิดกับสมองผ่านเส้นทางประสาท โดยเฉพาะเส้นประสาทเวกัส ความเชื่อมโยงนี้เรียกว่าแกนลำไส้–สมอง และอธิบายได้ว่าเหตุใดความเครียดทางจิตใจ เช่น ความเครียด จึงส่งผลต่อการย่อยอาหาร และเหตุใดไมโครไบโอมที่เสียสมดุลจึงส่งผลต่ออารมณ์ การนอนหลับ และสมาธิด้วย (Cryan et al., 2019)

SIBO (ภาวะแบคทีเรียเจริญเติบโตมากเกินไปในลำไส้เล็ก) หมายถึงการมีแบคทีเรียเจริญเติบโตมากเกินไปในลำไส้เล็ก โดยมีจำนวนแบคทีเรียสูงเกินไปหรือเป็นแบคทีเรียผิดประเภท จุลินทรีย์เหล่านี้รบกวนการดูดซึมสารอาหารและทำให้เกิดอาการต่าง ๆ เช่น ท้องอืด ปวดท้อง ภาวะขาดสารอาหาร และการแพ้อาหาร (Rezaie et al., 2020)

สาเหตุที่พบบ่อยของ SIBO คือการเคลื่อนไหวของลำไส้ที่ช้าลงหรือผิดปกติ การเคลื่อนไหวของลำไส้ดังกล่าวมีหน้าที่ลำเลียงก้อนอาหารผ่านทางเดินอาหารด้วยการเคลื่อนไหวเป็นจังหวะคลื่น

หากกลไกการชำระล้างตามธรรมชาตินี้ ซึ่งเรียกว่าการเคลื่อนไหวของลำไส้ถูกรบกวน การลำเลียงสิ่งที่อยู่ภายในลำไส้จะช้าลง ส่งผลให้แบคทีเรียสะสมและเพิ่มจำนวนในลำไส้เล็กสูงผิดปกติ จนนำไปสู่ภาวะแบคทีเรียเจริญเติบโตมากเกินไป การเพิ่มจำนวนของแบคทีเรียอย่างผิดปกตินี้เป็นลักษณะสำคัญของ SIBO และอาจทำให้เกิดอาการผิดปกติทางการย่อยอาหารและการอักเสบได้ (Rezaie et al., 2020)

การรักษาด้วยยาปฏิชีวนะซ้ำ ๆ ความเครียดเรื้อรัง หรือการรับประทานอาหารที่มีใยอาหารต่ำ ล้วนสามารถรบกวนสมดุลของไมโครไบโอมให้แย่ลงได้ ไม่เพียงแต่ความเครียดเรื้อรังเท่านั้น โดยเฉพาะความเครียดระยะสั้นยังทำให้ลำไส้ทำงานน้อยกว่าปกติ ในสถานการณ์ที่ตึงเครียด ร่างกายจะหลั่งฮอร์โมนความเครียด เช่น อะดรีนาลีนและคอร์ติซอล ซึ่งส่งผลต่อระบบประสาทอัตโนมัติและกระตุ้นการตอบสนองแบบ “ปิดการทำงาน”

สิ่งนี้จะลดการเคลื่อนไหวของลำไส้ ลดการไหลเวียนเลือดไปยังลำไส้ และชะลอการทำงานของระบบย่อยอาหาร เพื่อจัดสรรพลังงานให้กับการตอบสนองแบบ “สู้หรือหนี” การยับยั้งการทำงานของลำไส้ชั่วคราวนี้ส่งเสริมให้แบคทีเรียสะสมในลำไส้เล็ก และจึงเอื้อต่อการเกิดภาวะแบคทีเรียเจริญเติบโตมากเกินไปได้ (Konturek et al., 2011)

วิธีที่ตรงเป้าหมายในการช่วยสนับสนุนสมดุลของจุลินทรีย์ในลำไส้เล็ก คือการผลิตโยเกิร์ตโพรไบโอติกด้วยสายพันธุ์แบคทีเรียเฉพาะ ได้แก่ Limosilactobacillus reuteri, Lactobacillus gasseri และ Bacillus coagulans, จุลินทรีย์โพรไบโอติกสามชนิดที่มีศักยภาพต่อปัญหาที่เกี่ยวข้องกับ SIBO ซึ่งมีหลักฐานบันทึกไว้ ได้แก่ การยับยั้งเชื้อก่อโรค การปรับการทำงานของระบบภูมิคุ้มกัน และการปกป้องเยื่อบุลำไส้ (Savino et al., 2010; Park et al., 2018; Hun, 2009)

ในบทนี้ คุณจะได้เรียนรู้วิธีทำโยเกิร์ตที่เรียกกันว่า SIBO ได้ง่าย ๆ ที่บ้าน คำแนะนำทีละขั้นตอนที่ให้มาจะแสดงวิธีหมักหัวเชื้อทั้งสามสายพันธุ์ที่คัดเลือกไว้โดยเฉพาะ เพื่อสร้างอาหารโพรไบโอติกที่เหมาะสำหรับผู้ที่มีภาวะแพ้แลคโตสด้วย

เสริมความแข็งแรงให้ไมโครไบโอม – บทบาทของ Lost Species

ไมโครไบโอมของมนุษย์กำลังเปลี่ยนแปลงอย่างลึกซึ้ง วิถีชีวิตสมัยใหม่ของเรา ซึ่งมีลักษณะเด่นคือการบริโภคอาหารแปรรูปสูง มาตรฐานสุขอนามัยที่เข้มงวด การผ่าคลอด ระยะเวลาให้นมบุตรที่สั้นลง และการใช้ยาปฏิชีวนะบ่อยครั้ง ทำให้จุลินทรีย์บางสายพันธุ์ซึ่งเคยเป็นส่วนหนึ่งของระบบนิเวศภายในร่างกายมนุษย์มานับพันปี แทบไม่พบในลำไส้มนุษย์ในปัจจุบัน

จุลินทรีย์เหล่านี้เรียกว่า “Lost Species” หรือ “สายพันธุ์ที่สูญหาย”

งานวิจัยทางวิทยาศาสตร์ชี้ว่า การสูญเสียสายพันธุ์เหล่านี้เชื่อมโยงกับการเพิ่มขึ้นของปัญหาสุขภาพสมัยใหม่ เช่น โรคภูมิแพ้ โรคภูมิคุ้มกันทำลายตนเอง การอักเสบเรื้อรัง ความผิดปกติทางจิต และโรคเมตาบอลิซึม (Blaser, 2014)

การฟื้นฟูไมโครไบโอมด้วยการเติม “Lost Species” อย่างตรงเป้าหมาย เปิดมุมมองใหม่สำหรับการป้องกันและรักษาโรคจากวิถีชีวิตสมัยใหม่หลายชนิด การนำจุลินทรีย์โบราณเหล่านี้กลับมาตั้งถิ่นฐานอีกครั้ง เช่น ผ่านโพรไบโอติกเฉพาะทาง อาหารหมัก หรือแม้แต่การปลูกถ่ายอุจจาระ เป็นแนวทางที่มีความหวังในการเสริมความหลากหลายของจุลินทรีย์ และเพิ่มความแข็งแกร่งของร่างกาย

สามสายพันธุ์สำคัญ เพื่อการสนับสนุนไมโครไบโอมอย่างแข็งแกร่ง

ชุดเริ่มต้นประกอบด้วย Limosilactobacillus reuteri ซึ่งเป็น Lost Species ที่มีการระบุไว้อย่างชัดเจน กล่าวคือ เป็นสายพันธุ์จุลินทรีย์ที่ลดลงอย่างมากหรือแทบสูญหายไปจากระบบนิเวศในลำไส้ของชาวตะวันตกยุคใหม่

Lactobacillus gasseri พบได้น้อยลงกว่าแต่ก่อน และพบได้ยากในไมโครไบโอมของชาวตะวันตกจำนวนมากหากไม่ได้รับจากภายนอก แต่ไม่ถือเป็น Lost Species แบบดั้งเดิม

Bacillus coagulans ไม่ใช่จุลินทรีย์ในลำไส้โดยตรง แต่เป็นจุลินทรีย์ในดินที่สร้างสปอร์และพบในลำไส้เป็นครั้งคราวเท่านั้น ไม่ใช่ Lost Species แต่เป็นสายพันธุ์หายากที่นำเข้าสู่ร่างกายและมีคุณสมบัติพิเศษในการช่วยเสริมความมั่นคงให้ลำไส้

ดังนั้น การผสมผสานนี้จึงรวม Lost Species แบบดั้งเดิมเข้ากับสายพันธุ์หายากที่ได้รับการพิสูจน์แล้ว เพื่อช่วยสนับสนุนไมโครไบโอมของคุณอย่างตรงเป้าหมายและหลากหลาย

Limosilactobacillus reuteri – จุลินทรีย์สำคัญต่อสุขภาพ

Limosilactobacillus reuteri คืออะไร

Limosilactobacillus reuteri (เดิมชื่อ: Lactobacillus reuteri) เป็นแบคทีเรียโพรไบโอติกที่เดิมเคยเป็นส่วนหนึ่งของไมโครไบโอมมนุษย์อย่างสม่ำเสมอ โดยเฉพาะในทารกที่กินนมแม่และผู้คนในวัฒนธรรมดั้งเดิม อย่างไรก็ตาม ในสังคมสมัยใหม่ที่พัฒนาเป็นอุตสาหกรรม แบคทีเรียชนิดนี้แทบสูญหายไปแล้ว โดยสันนิษฐานว่าเกิดจากการผ่าคลอด การใช้ยาปฏิชีวนะ สุขอนามัยที่มากเกินไป และอาหารที่มีสารอาหารไม่เพียงพอ (Blaser, 2014)

L. reuteri โดดเด่นด้วยความสามารถที่ไม่ธรรมดา นั่นคือการมีปฏิสัมพันธ์โดยตรงกับระบบภูมิคุ้มกัน สมดุลฮอร์โมน และแม้แต่ระบบประสาทส่วนกลาง งานวิจัยจำนวนมากแสดงให้เห็นว่า สมาชิกจุลินทรีย์ประจำถิ่นชนิดนี้อาจส่งผลดีต่อการย่อยอาหาร การนอนหลับ การควบคุมความเครียด การเจริญเติบโตของกล้ามเนื้อ และสุขภาวะทางอารมณ์

สรุปคุณสมบัติสำคัญของ Limosilactobacillus reuteri

• ส่งเสริมไมโครไบโอมที่แข็งแรง
• กระตุ้นการผลิตออกซิโทซินผ่านแกนลำไส้–สมอง
• ช่วยควบคุมระบบภูมิคุ้มกันและมีฤทธิ์ต้านการอักเสบ
• ช่วยให้นอนหลับลึกขึ้น
• ช่วยสนับสนุนความต้องการทางเพศและการทำงานทางเพศ
• ส่งเสริมการเติบโตของกล้ามเนื้อ
• ช่วยลดไขมันในช่องท้อง
• ช่วยให้อารมณ์คงที่
• ช่วยปรับสภาพผิวให้เรียบเนียน
• ช่วยเพิ่มสมรรถภาพทางกาย

Lactobacillus gasseri – คู่หูอเนกประสงค์สำหรับลำไส้และการเผาผลาญ

Lactobacillus gasseri คืออะไร

Lactobacillus gasseri เป็นแบคทีเรียโพรไบโอติกที่พบได้ตามธรรมชาติในลำไส้มนุษย์ แต่พบได้น้อยกว่าในสังคมสมัยใหม่ที่ผ่านการพัฒนาอุตสาหกรรม เมื่อเทียบกับในอดีต (Kleerebezem & Vaughan, 2009) แบคทีเรียชนิดนี้อยู่ในกลุ่มแบคทีเรียกรดแลกติกและมีบทบาทสำคัญในการรักษาสมดุลของจุลินทรีย์ในลำไส้ให้มีสุขภาพดี

L. gasseri เป็นที่รู้จักจากผลดีอันหลากหลายต่อการย่อยอาหาร การเผาผลาญ และระบบภูมิคุ้มกัน แม้จะไม่ถือเป็น “สายพันธุ์ที่สูญหายไป” แบบคลาสสิก แต่ปัจจุบันการพบแบคทีเรียชนิดนี้ในลำไส้ของผู้คนจำนวนมากลดลงอย่างมีนัยสำคัญ

เหตุใด L. gasseri จึงมีความสำคัญ

Lactobacillus gasseri ช่วยส่งเสริมสุขภาพในหลายด้าน โดยเฉพาะด้านการเผาผลาญ การทำงานของลำไส้ และระบบภูมิคุ้มกัน ความสามารถในการลดเนื้อเยื่อไขมันและยับยั้งการอักเสบทำให้เป็นโพรไบโอติกที่สำคัญสำหรับผู้ที่มีภาวะน้ำหนักเกินหรือปัญหาด้านการเผาผลาญ แม้ปัจจุบันจะพบ L. gasseri ได้น้อยกว่าในประชากรดั้งเดิม แต่ก็ไม่ใช่ตัวแทนคลาสสิกของ “สายพันธุ์ที่สูญหายไป” และเป็นส่วนเสริมที่มีคุณค่าต่อไมโครไบโอมที่แข็งแรง

สรุปคุณสมบัติสำคัญของ Lactobacillus gasseri:

• ช่วยรักษาสมดุลของไมโครไบโอมในลำไส้
• ส่งเสริมการผลิตกรดแลกติกเพื่อควบคุมค่า pH
• ช่วยสลายไขมันหน้าท้องและไขมันในช่องท้อง
• ช่วยสนับสนุนการเผาผลาญ
• มีส่วนช่วยลดการอักเสบ
• ช่วยปรับสมดุลระบบภูมิคุ้มกัน
• ส่งเสริมสุขภาพระบบย่อยอาหาร
• ช่วยเสริมสุขภาวะโดยรวม

Bacillus coagulans – ผู้ช่วยที่แข็งแกร่งสำหรับสุขภาพลำไส้และระบบภูมิคุ้มกัน

Bacillus coagulans คืออะไร

Bacillus coagulans เป็นแบคทีเรียโพรไบโอติกที่สร้างสปอร์ และมีคุณสมบัติทนทานต่อความร้อน กรด และการเก็บรักษาได้สูง (Elshaghabee et al., 2017) แตกต่างจากโพรไบโอติกหลายชนิด B. coagulans สามารถผ่านกระเพาะอาหารได้ดีเป็นพิเศษและเจริญเติบโตในลำไส้ได้อย่างแข็งขัน ด้วยคุณสมบัติเหล่านี้ จึงมักนำมาใช้ในผลิตภัณฑ์เสริมอาหารและอาหารหมัก

พบ B. coagulans ในอาหารแบบดั้งเดิม เช่น ผักหมักและผลิตภัณฑ์อาหารเอเชียบางชนิด แบคทีเรียชนิดนี้มีส่วนสำคัญอย่างยิ่งต่อความเสถียรและสุขภาพของไมโครไบโอม

แบคทีเรียที่สร้างสปอร์ – คนสวนของไมโครไบโอม

แบคทีเรียโพรไบโอติกที่สร้างสปอร์ เช่น Bacillus coagulans ได้รับการขนานนามว่าเป็น “คนสวน” ของลำไส้ในการวิจัยไมโครไบโอม การเรียกเช่นนี้มาจากความสามารถพิเศษในการควบคุมระบบนิเวศจุลินทรีย์อย่างแข็งขันและรักษาสมดุลให้มีสุขภาพดี จุดเด่นสำคัญคือความสามารถในการสร้างสปอร์ เมื่อเผชิญสภาวะแวดล้อมที่ไม่เอื้ออำนวย จุลินทรีย์เหล่านี้สามารถเปลี่ยนเป็นรูปแบบพักตัวที่ทนทานสูง หรือที่เรียกว่าเอนโดสปอร์ได้

สปอร์นี้ไม่ใช่รูปแบบการสืบพันธุ์ แต่เป็นรูปแบบการอยู่รอด ในรูปสปอร์ สารพันธุกรรมจะได้รับการปกป้องอยู่ภายในเปลือกหนาหลายชั้นที่มีความหนาแน่นสูง ทำให้แบคทีเรียสามารถทนต่ออุณหภูมิสุดขั้ว ความแห้ง รังสี UV แอลกอฮอล์ ภาวะขาดออกซิเจน และโดยเฉพาะกรดในกระเพาะอาหาร

ดังนั้น แบคทีเรียที่สร้างสปอร์ เช่น B. coagulans จึงผ่านระบบทางเดินอาหารไปได้โดยแทบไม่ได้รับความเสียหาย จนกระทั่งถึงลำไส้เล็ก ซึ่งภายใต้สภาวะที่เหมาะสม เช่น ความชื้น อุณหภูมิ และเกลือน้ำดี แบคทีเรียเหล่านี้จึงงอกกลับมาและเริ่มทำงานอีกครั้ง (Setlow, 2014; Elshaghabee et al., 2017)

แบคทีเรียที่ไม่สร้างสปอร์แตกต่างกันอย่างไร?

ในทางตรงกันข้าม แบคทีเรียที่ไม่สร้างสปอร์ เช่น Limosilactobacillus reuteri หรือ Bifidobacterium infantis มีบทบาทที่จำเพาะมากกว่าในการสื่อสารระหว่างระบบประสาทและต่อมไร้ท่อ โดยมีอิทธิพลต่อเส้นทางการส่งสัญญาณระหว่างลำไส้ ระบบประสาท และระบบฮอร์โมน

แบคทีเรียโพรไบโอติกที่ไม่สร้างสปอร์ เช่น Limosilactobacillus reuteri และ Bifidobacterium infantis มีส่วนร่วมอย่างแข็งขันในการควบคุมระบบประสาทและต่อมไร้ท่อ หรือก็คือการปรับการทำงานอย่างละเอียดระหว่างระบบประสาทกับระบบฮอร์โมน จุลินทรีย์เหล่านี้ผลิตสารตั้งต้นของสารสื่อประสาท เช่น ทริปโตเฟน (สารตั้งต้นของเซโรโทนิน) หรือ GABA (กรดแกมมา-อะมิโนบิวทิริก) และกระตุ้นการหลั่งสารสื่อกลางสำคัญ เช่น เซโรโทนินและออกซิโทซิน ผ่านตัวรับในลำไส้ รวมถึงผ่านเส้นประสาทเวกัส

ด้วยวิธีนี้ แบคทีเรียเหล่านี้จึงมีอิทธิพลต่อกระบวนการทางอารมณ์และฮอร์โมน เช่น อารมณ์ การรับมือกับความเครียด คุณภาพการนอนหลับ และการสร้างความผูกพันทางสังคม ผลของแบคทีเรียเหล่านี้ต่อสิ่งที่เรียกว่าแกนลำไส้–สมองมีหลักฐานรองรับอย่างชัดเจน และกำลังได้รับการศึกษาเชิงการรักษาเพิ่มขึ้น โดยเฉพาะในความเชื่อมโยงกับโรคที่เกี่ยวข้องกับความเครียดและอาการทางจิตกาย (Buffington et al., 2016; O’Mahony et al., 2015)

แบคทีเรียที่สร้างสปอร์ เช่น Bacillus coagulans ออกฤทธิ์เฉพาะที่ในลำไส้เป็นหลัก โดยช่วยส่งเสริมสมดุลของจุลินทรีย์ในลำไส้และเสริมความแข็งแรงให้กับการทำงานปกป้องของเยื่อบุลำไส้ จึงช่วยสนับสนุนการทำหน้าที่เป็นเกราะป้องกันของลำไส้และช่วยควบคุมจุลินทรีย์ที่เป็นอันตราย

ต่างจากแบคทีเรียที่ไม่สร้างสปอร์ แบคทีเรียเหล่านี้มีผลโดยตรงต่อการทำงานของร่างกายในระดับสูงหรือการสื่อสารระหว่างลำไส้กับสมองค่อนข้างจำกัด โดยหลักแล้วจะออกฤทธิ์ในสภาพแวดล้อมระดับจุลภาคของลำไส้ (Elshaghabee et al., 2017; Mazanko et al., 2018)

แบคทีเรียในลำไส้ชนิดอื่นที่สร้างสปอร์

นอกจาก Bacillus coagulans แล้ว สายพันธุ์ต่อไปนี้ก็จัดอยู่ในกลุ่มแบคทีเรียที่สร้างสปอร์:

• Bacillus subtilis – จุลินทรีย์แห่งปี 2023 ซึ่งเป็นที่รู้จักจากนัตโตะ ช่วยรักษาสมดุลของไมโครไบโอมและผลิตเอนไซม์
• Clostridium butyricum – ผลิตบิวทิเรตและมีฤทธิ์ต้านการอักเสบ
• Bacillus clausii – พิสูจน์แล้วว่ามีประสิทธิภาพต่ออาการท้องเสียหลังใช้ยาปฏิชีวนะ
• Bacillus indicus – ผลิตแคโรทีนอยด์ที่มีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ

สายพันธุ์เหล่านี้ยังมีความทนทานสูง และช่วยควบคุมการทำงานของภูมิคุ้มกัน ความสมบูรณ์ของเกราะป้องกันลำไส้ และสมดุลของจุลินทรีย์ (Cutting, 2011; Elshaghabee et al., 2017)

เหตุใด Bacillus coagulans จึงมีความสำคัญ?

ด้วยความแข็งแกร่งสูงและประสิทธิภาพด้านโพรไบโอติก Bacillus coagulans จึงเป็นตัวช่วยที่มีคุณค่าสำหรับสุขภาพลำไส้ โดยเฉพาะในผู้ที่มีระบบย่อยอาหารบอบบางหรือมีข้อร้องเรียนเกี่ยวกับลำไส้เรื้อรัง ทั้งยังช่วยเสริมการทำงานของโพรไบโอติกสายพันธุ์อื่นด้วยความสามารถเฉพาะตัวในการคงประสิทธิภาพในรูปสปอร์ได้แม้อยู่ภายใต้สภาวะที่ไม่เอื้ออำนวย

สรุปลักษณะสำคัญของ Bacillus coagulans:

• ช่วยฟื้นฟูไมโครไบโอมให้มีสุขภาพดี
• ผลิตกรดแลกติกเพื่อควบคุมค่า pH ในลำไส้
• ช่วยส่งเสริมการย่อยอาหารและการดูดซึมสารอาหาร
• ปรับการทำงานของระบบภูมิคุ้มกันและลดการอักเสบ
• บรรเทาอาการลำไส้แปรปรวนและข้อร้องเรียนด้านการย่อยอาหารอื่น ๆ
• อยู่รอดระหว่างการผ่านกระเพาะอาหารได้ด้วยการสร้างสปอร์
• ทนความร้อนและกรด จึงสะดวกต่อการเก็บรักษา
• ช่วยให้จุลินทรีย์ในลำไส้มีเสถียรภาพผ่านการสร้างสปอร์
• ส่งเสริมการควบคุมการทำงานของภูมิคุ้มกัน
• ช่วยลดการอักเสบ
• เพิ่มความต้านทานต่อปัจจัยก่อความเครียด
• มีผลดีต่อเกราะป้องกันลำไส้

แหล่งข้อมูล:

• https://innercircle.drdavisinfinitehealth.com/probiotic_yogurt_recipes
• Foster, J. A., Rinaman, L., & Cryan, J. F. (2017). ความเครียดและแกนลำไส้–สมอง: การควบคุมโดยไมโครไบโอม Neurobiology of Stress, 7, 124–136.
• Furness, J. B. (2012). ระบบประสาทลำไส้และประสาททางเดินอาหาร Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology, 9(5), 286–294.
• Cryan, J. F., O’Riordan, K. J., Cowan, C. S. M., Sandhu, K. V., Bastiaanssen, T. F. S., Boehme, M., ... & Dinan, T. G. (2019). แกนจุลินทรีย์–ลำไส้–สมอง Physiological Reviews, 99(4), 1877–2013.
• Rezaie, A., Buresi, M., Lembo, A., Lin, H., McCallum, R., Rao, S., ... & Pimentel, M. (2020). การทดสอบลมหายใจโดยอาศัยไฮโดรเจนและมีเทนในโรคระบบทางเดินอาหาร: ฉันทามติแห่งอเมริกาเหนือ The American Journal of Gastroenterology, 115(5), 662–681.
• Rezaie, A., Buresi, M., Lembo, A., Lin, H. C., McCallum, R., Rao, S., ... & Pimentel, M. (2020). การทดสอบลมหายใจโดยอาศัยไฮโดรเจนและมีเทนในโรคระบบทางเดินอาหาร: ฉันทามติแห่งอเมริกาเหนือ The American Journal of Gastroenterology, 115(5), 675–684. https://doi.org/10.14309/ajg.0000000000000544
• Konturek, P. C., Brzozowski, T., & Konturek, S. J. (2011). ความเครียดและลำไส้: พยาธิสรีรวิทยา ผลกระทบทางคลินิก แนวทางการวินิจฉัย และทางเลือกในการรักษา Journal of Physiology and Pharmacology, 62(6), 591–599.
• Savino, F., Cordisco, L., Tarasco, V., Locatelli, E., Di Gioia, D., & Matteuzzi, D. (2010). Lactobacillus reuteri DSM 17938 ในอาการโคลิกในทารก: การทดลองแบบสุ่ม ปกปิดสองฝ่าย และมีกลุ่มควบคุมด้วยยาหลอก Pediatrics, 126(3), e526–e533.
• Park, J. H., Lee, J. H. และ Shin, S. C. (2018). ผลการรักษาของ Lactobacillus gasseri ต่อภาวะลำไส้ใหญ่อักเสบเรื้อรังและจุลินทรีย์ในลำไส้ Journal of Microbiology and Biotechnology, 28(12), 1970–1979.
• Hun, L. (2009). Bacillus coagulans ช่วยให้อาการปวดท้องและท้องอืดในผู้ป่วย IBS ดีขึ้นอย่างมีนัยสำคัญ Postgraduate Medicine, 121(2), 119–124.
• Kadooka, Y., Sato, M., Imaizumi, K. และคณะ (2010). การควบคุมภาวะไขมันสะสมในช่องท้องด้วยโพรไบโอติก (Lactobacillus gasseri SBT2055) ในผู้ใหญ่ที่มีแนวโน้มเป็นโรคอ้วนจากการทดลองแบบสุ่มมีกลุ่มควบคุม European Journal of Clinical Nutrition, 64(6), 636-643.
• Kleerebezem, M. และ Vaughan, E. E. (2009). โพรไบโอติกและแลคโตบาซิลลัสกับบิฟิโดแบคทีเรียในลำไส้: แนวทางระดับโมเลกุลเพื่อศึกษาความหลากหลายและกิจกรรม Annual Review of Microbiology, 63, 269–290.
• Park, S., Bae, J.-H. และ Kim, J. (2013). ผลของ Lactobacillus gasseri BNR17 ต่อน้ำหนักตัวและมวลเนื้อเยื่อไขมันในหนูที่เป็นโรคอ้วนจากอาหาร Journal of Microbiology and Biotechnology, 23(3), 344-349.
• Kim, H. S., Lee, B. J. และ Lee, J. S. (2015). Lactobacillus gasseri ส่งเสริมการทำงานของแนวกั้นลำไส้ในเซลล์ Caco-2 Journal of Microbiology, 53(3), 169-176.
• Matsumoto, M., Inoue, R., Tsukahara, T. และคณะ (2008). ผลกระทบของจุลินทรีย์ในลำไส้ต่อเมตาโบโลมในลูเมนของลำไส้ Scientific Reports, 8, 7800.
• Mayer, E. A., Tillisch, K. และ Gupta, A. (2014). แกนลำไส้/สมองและจุลินทรีย์ The Journal of Clinical Investigation, 124(10), 4382–4390.
• Elshaghabee, F. M. F., Rokana, N., Gulhane, R. D., Sharma, C. และ Panwar, H. (2017). โพรไบโอติกกลุ่ม Bacillus: Bacillus coagulans ผู้มีศักยภาพสำหรับอาหารฟังก์ชันและผลิตภัณฑ์ยา Frontiers in Microbiology, 8, 1490.
• Shah, N., Yadav, S., Singh, A. และ Prajapati, J. B. (2019). ประสิทธิผลของ Bacillus coagulans ในการส่งเสริมสุขภาพลำไส้: บททบทวน Journal of Applied Microbiology, 126(4), 1224-1233.
• Ghane, M., Azadbakht, M. และ Salehi-Abargouei, A. (2020). ผลของการเสริม Bacillus coagulans ต่อกิจกรรมของเอนไซม์ย่อยอาหารและจุลินทรีย์ในลำไส้: การทบทวนอย่างเป็นระบบ Probiotics and Antimicrobial Proteins, 12, 1252–1261.
• Majeed, M., Nagabhushanam, K. และ Arshad, M. (2018). ผลของ Bacillus coagulans ต่อการปรับภูมิคุ้มกันในภาวะสุขภาพและโรค Microbial Pathogenesis, 118, 101-105.
• Khatri, S., Mishra, R. และ Jain, S. (2019). Bacillus coagulans สำหรับการรักษาโรคลำไส้แปรปรวน: การทดลองแบบสุ่มมีกลุ่มควบคุม Clinical and Experimental Gastroenterology, 12, 69–76.
• Buffington, S. A. และคณะ (2016). การปรับคืนจุลินทรีย์ช่วยย้อนกลับความบกพร่องด้านสังคมและไซแนปส์ในลูกหลานที่เกิดจากอาหารของมารดา Cell, 165(7), 1762–1775.
• Cutting, S. M. (2011). โพรไบโอติก Bacillus. Food Microbiology, 28(2), 214–220.
• Elshaghabee, F. M. F. et al. (2017). Bacillus ในฐานะโพรไบโอติกที่มีศักยภาพ: สถานะ ข้อกังวล และมุมมองในอนาคต. Frontiers in Microbiology, 8, 1490.
• Ghelardi, E. et al. (2015). ผลกระทบของสปอร์ Bacillus clausii ต่อองค์ประกอบและโปรไฟล์เมแทบอลิซึมของจุลชีพประจำถิ่นในลำไส้. Frontiers in Microbiology, 6, 1390.
• Hong, H. A. et al. (2005). การใช้แบคทีเรียที่สร้างสปอร์เป็นโพรไบโอติก. FEMS Microbiology Reviews, 29(4), 813–835.
• Mazanko, M. S. et al. (2018). คุณสมบัติโพรไบโอติกของแบคทีเรีย Bacillus. Veterinaria i Kormlenie, (4), 30–35.
• O'Mahony, S. M. et al. (2015). จุลชีพประจำถิ่นและโรคในวัยเด็ก: มุ่งเน้นแกนสมอง–ลำไส้. Birth Defects Research Part C, 105(4), 296–313.
• Setlow, P. (2014). การงอกของสปอร์ของสายพันธุ์ Bacillus: สิ่งที่เรารู้และยังไม่รู้. Journal of Bacteriology, 196(7), 1297–1305.
• Buffington SA et al. (2016): การฟื้นฟูจุลชีพกลับคืนสามารถย้อนกลับความบกพร่องด้านพฤติกรรมสังคมและการเชื่อมต่อระหว่างเซลล์ประสาทในลูกหลานที่เกิดจากอาหารของมารดาได้. Cell 165(7): 1762–1775.
• O’Mahony SM et al. (2015): จุลชีพประจำถิ่นและโรคในวัยเด็ก: มุ่งเน้นแกนสมอง–ลำไส้. Birth Defects Research Part C 105(4): 296–313.
• Elshaghabee FMF, Rokana N, Gulhane RD, Sharma C, Panwar H. โพรไบโอติก Bacillus: ภาพรวม. Front Microbiol. 2017;8:1490. doi:10.3389/fmicb.2017.01490
• Mazanko MS, Morozov IV, Klimenko NS, Babenko VA. ผลด้านการปรับภูมิคุ้มกันของสปอร์ Bacillus coagulans ในลำไส้. Microbiology. 2018;87(3):336–343. doi:10.1134/S0026261718030148

แหล่งข้อมูลทางวิทยาศาสตร์ "วิธีหมัก L. reuteri ในน้ำแอปเปิล: น้ำผลไม้โพรไบโอติกเป็นทางเลือกแทนโยเกิร์ต L. reuteri"

Ji G. et al. (2023). อิทธิพลของการหมักด้วยแบคทีเรียกรดแลกติกต่อสารให้กลิ่นหอมและส่วนประกอบเชิงหน้าที่ของน้ำแอปเปิล. Food Bioscience, 51, 102337.

นำน้ำแอปเปิลมาหมักด้วย L. reuteri และวิเคราะห์ในช่วงเวลาการหมักที่แตกต่างกัน ภายใต้เงื่อนไขการทดลอง พบว่าระยะเวลาการหมักประมาณ 18 ชั่วโมงเป็นระยะเวลาที่เหมาะสมที่สุด

Perricone M. et al. (2014). ความสามารถในการมีชีวิตรอดของ Lactobacillus reuteri ในน้ำผลไม้. Journal of Functional Foods, 10, 421–426.

การศึกษานี้ได้ตรวจสอบ L. reuteri ในน้ำผลไม้หลายชนิด รวมถึงน้ำแอปเปิล น้ำส้ม และน้ำสับปะรด

Guo W. et al. (2025). การปรับปรุงคุณลักษณะทางเคมีกายภาพ ฤทธิ์ทางชีวภาพ รสชาติ และโปรไฟล์เมแทบอลิซึมของน้ำมะม่วงที่หมักด้วย Limosilactobacillus reuteri. International Journal of Food Microbiology.

การศึกษานี้ได้ตรวจสอบการหมักน้ำมะม่วงด้วย L. reuteri และบันทึกการเปลี่ยนแปลงของปริมาณน้ำตาล เมแทบอไลต์ และคุณลักษณะอื่น ๆ ระหว่างการหมัก