ฟื้นฟูไมโครไบโอมด้วยสายพันธุ์ที่สูญหายไป – ด้วยโยเกิร์ตจาก L. reuteri, L. gasseri และ B. coagulans - โยเกิร์ตสำหรับ SIBO

อัปเดตเมื่อวันที่ 16 สิงหาคม 2026

สูตร: L. reuteri, L. gasseri และ B. coagulans – ทำโยเกิร์ต SIBO ด้วยตัวเอง

เหมาะสำหรับผู้ที่มีภาวะไม่ทนต่อแลคโตสด้วย (ดูหมายเหตุด้านล่าง)

โปรดปฏิบัติตามอุณหภูมิการหมักอย่างเคร่งครัด

อุณหภูมิการหมักที่เหมาะสมสำหรับแบคทีเรียทั้งสามสายพันธุ์ร่วมกัน:

41 °C (106 °F)

ส่วนผสม (สำหรับโยเกิร์ตประมาณ 1 ลิตร)

• แคปซูล L. reuteri 4 แคปซูล (แคปซูลละ 5 พันล้าน CFU)
• แคปซูล L. gasseri 1 แคปซูล (แคปซูลละ 12 พันล้าน CFU)
• แคปซูล B. coagulans 2 แคปซูล (แคปซูลละ 4 พันล้าน CFU)
• อินูลิน 1 ช้อนโต๊ะ (หรือใช้ GOS หรือ XOS แทน หากไม่ทนต่อฟรุกโตส)
• นมโฮลมิลก์ (ออร์แกนิก) 1 ลิตร ไขมัน 3.8% ผ่านการฆ่าเชื้อด้วยอุณหภูมิสูงเป็นพิเศษและทำให้เป็นเนื้อเดียวกัน หรือนม UHT
• (ยิ่งนมมีไขมันสูง โยเกิร์ตก็ยิ่งข้น)

หมายเหตุ:

• 1 แคปซูล L. reuteri, อย่างน้อย 5 × 10⁹ (5 พันล้าน) CFU (en)/KBE (de)
• CFU ย่อมาจาก หน่วยก่อโคโลนี – ในภาษาเยอรมันเรียกว่า kolonie-bildende Einheiten (KBE) หน่วยนี้บ่งบอกจำนวนจุลินทรีย์ที่ยังมีชีวิตอยู่ในผลิตภัณฑ์

หมายเหตุเกี่ยวกับการเลือกนมและอุณหภูมิ

• อย่าใช้นมสด เพราะไม่คงตัวเพียงพอสำหรับการหมักเป็นเวลานานและไม่ปราศจากเชื้อ
• นม UHT (นมที่ผ่านการฆ่าเชื้อด้วยอุณหภูมิสูงเป็นพิเศษและเก็บได้นาน) เหมาะที่สุด เพราะปราศจากเชื้อและใช้ได้ทันที
• นมควรมีอุณหภูมิห้อง – หรืออุ่นอย่างเบามือในอ่างน้ำให้ถึง 37 °C (99 °F) หลีกเลี่ยงอุณหภูมิที่สูงกว่านี้: ตั้งแต่ประมาณ 44 °C ขึ้นไป จุลินทรีย์โพรไบโอติกจะเสียหายหรือถูกทำลาย

อุณหภูมิการหมักที่เหมาะสมสำหรับชุดเริ่มต้นแต่ละชุด

การเตรียม

1. เปิดแคปซูลทั้งหมด 7 แคปซูล แล้วเทผงลงในชามใบเล็ก
2. เติมอินูลิน 1 ช้อนโต๊ะต่อนม 1 ลิตร – อินูลินทำหน้าที่เป็นพรีไบโอติกและช่วยส่งเสริมการเจริญเติบโตของแบคทีเรีย ผู้ที่มีภาวะไม่ทนต่อฟรุกโตสสามารถใช้ GOS หรือ XOS แทนได้
3. เติมนม 2 ช้อนโต๊ะลงในชาม แล้วคนให้เข้ากันเพื่อไม่ให้จับตัวเป็นก้อน
4. เติมนมที่เหลือแล้วคนให้เข้ากัน
5. เทส่วนผสมลงในภาชนะที่เหมาะสำหรับการหมัก (เช่น แก้ว)
6. ใส่ลงในเครื่องทำโยเกิร์ต ตั้งอุณหภูมิไว้ที่ 41 °C (106 °F) แล้วหมักทิ้งไว้ 36 ชั่วโมง

ตั้งแต่ชุดที่สองเป็นต้นไป ให้ใช้โยเกิร์ตจากชุดก่อนหน้า 2 ช้อนโต๊ะเป็นหัวเชื้อ

คุณเตรียมชุดแรกโดยใช้แคปซูลแบคทีเรีย

ตั้งแต่ชุดที่สองเป็นต้นไป ให้ใช้โยเกิร์ตจากชุดก่อนหน้า 2 ช้อนโต๊ะเป็นหัวเชื้อ ใช้วิธีนี้ได้แม้โยเกิร์ตชุดแรกจะยังเหลวหรือไม่ข้นดี ตราบใดที่ยังมีกลิ่นสด รสเปรี้ยวอ่อนๆ และไม่มีสัญญาณว่าเสีย (ไม่มีรา ไม่มีสีผิดปกติ และไม่มีกลิ่นฉุน)

ต่อนม 1 ลิตร:

• โยเกิร์ตจากชุดก่อนหน้า 2 ช้อนโต๊ะ

• อินูลิน 1 ช้อนโต๊ะ

• นมยูเอชที 1 ลิตร หรือนมสดโฮลมิลค์ที่ผ่านการฆ่าเชื้อด้วยความร้อนสูงและโฮโมจีไนซ์

วิธีทำ:

1. ใส่โยเกิร์ตจากชุดก่อนหน้า 2 ช้อนโต๊ะลงในชามใบเล็ก

2. เติมอินูลิน 1 ช้อนโต๊ะ แล้วเติมนม 2 ช้อนโต๊ะและคนให้เนียนจนไม่เหลือเม็ด

3. เติมนมที่เหลือแล้วคนให้เข้ากัน

4. เทส่วนผสมลงในภาชนะที่เหมาะสำหรับการหมัก แล้วนำไปใส่ในเครื่องทำโยเกิร์ต

5. หมักที่อุณหภูมิ 41 °C เป็นเวลา 36 ชั่วโมง

หมายเหตุ: อินูลินเป็นอาหารของจุลินทรีย์ ให้เติมอินูลิน 1 ช้อนโต๊ะต่อนม 1 ลิตรในแต่ละชุด

หากมีข้อสงสัย เรายินดีช่วยเหลือทางอีเมลที่ team@tramunquiero.com หรือผ่านแบบฟอร์มติดต่อของเรา

ทำไมต้อง 36 ชั่วโมง?

การเลือกใช้เวลาหมักเท่านี้มีพื้นฐานทางวิทยาศาสตร์: L. reuteri ต้องใช้เวลาประมาณ 3 ชั่วโมงในการเพิ่มจำนวนเป็นสองเท่า ภายใน 36 ชั่วโมงจะเกิดการเพิ่มจำนวนเป็นสองเท่า 12 รอบ ซึ่งสอดคล้องกับการเติบโตแบบเอ็กซ์โพเนนเชียลและทำให้ผลิตภัณฑ์สำเร็จรูปมีจุลินทรีย์โพรไบโอติกที่ออกฤทธิ์ในปริมาณสูง นอกจากนี้ การบ่มที่นานขึ้นยังช่วยให้กรดแลคติกคงตัวและทำให้จุลินทรีย์มีความทนทานเป็นพิเศษ

!ข้อควรทราบสำคัญ!

ผู้ใช้หลายคนมักทำโยเกิร์ตชุดแรกไม่สำเร็จ อย่างไรก็ตาม ไม่ควรทิ้ง แต่แนะนำให้เริ่มทำชุดใหม่โดยใช้โยเกิร์ตชุดแรก 2 ช้อนโต๊ะเป็นหัวเชื้อ หากชุดนี้ยังไม่สำเร็จ โปรดตรวจสอบอุณหภูมิของเครื่องทำโยเกิร์ต สำหรับเครื่องที่สามารถตั้งอุณหภูมิได้อย่างแม่นยำถึงระดับองศา โดยทั่วไปมักทำชุดแรกได้สำเร็จ

เคล็ดลับเพื่อผลลัพธ์ที่สมบูรณ์แบบ

• โยเกิร์ตชุดแรกมักจะเหลวหรือเป็นเม็ดเล็กน้อย ให้นำโยเกิร์ตจากชุดก่อนหน้า 2 ช้อนโต๊ะมาใช้เป็นหัวเชื้อสำหรับชุดถัดไป โดยเนื้อสัมผัสจะดีขึ้นเมื่อทำแต่ละชุดใหม่
• ไขมันมากขึ้น = เนื้อข้นขึ้น: ยิ่งนมมีไขมันสูง โยเกิร์ตก็ยิ่งมีเนื้อครีมมี่
• โยเกิร์ตที่ทำเสร็จแล้วเก็บในตู้เย็นได้นานถึง 9 วัน

คำแนะนำในการรับประทาน:

รับประทานโยเกิร์ตวันละประมาณครึ่งถ้วย (ประมาณ 125 มล.) โดยควรรับประทานเป็นประจำ เช่น มื้อเช้าหรือเป็นอาหารว่างระหว่างมื้อ เพื่อให้จุลินทรีย์ที่อยู่ในโยเกิร์ตเติบโตได้อย่างเหมาะสมและช่วยดูแลไมโครไบโอมของคุณอย่างยั่งยืน

การเก็บแคปซูลแบคทีเรีย

เก็บแคปซูลแบคทีเรียไว้ในที่เย็นและแห้ง ควรเก็บไว้ในตู้เย็น

ถุงพลาสติกแบบปิดผนึกซ้ำได้ช่วยปกป้องแคปซูลจากความชื้น จึงเหมาะสำหรับเก็บในตู้เย็น

ดูข้อมูลเพิ่มเติมได้จากคำถามที่พบบ่อยในคำอธิบายสินค้า หรือส่วน คำถามที่พบบ่อย (FAQ) ในส่วนท้ายของร้านค้าออนไลน์ของเรา

การทำโยเกิร์ตจากนมพืช – ทางเลือกจากกะทิ

หากคุณกำลังพิจารณาใช้นมจากพืชทำโยเกิร์ต SIBO เนื่องจากแพ้แลคโตส โปรดทราบว่าโดยทั่วไปแล้วไม่จำเป็น ในระหว่างการหมัก แบคทีเรียโพรไบโอติกจะย่อยแลคโตสส่วนใหญ่ที่มีอยู่ ดังนั้นโยเกิร์ตที่ทำเสร็จแล้วจึงมักรับประทานได้โดยไม่เกิดปัญหา แม้ผู้ที่แพ้แลคโตส

อย่างไรก็ตาม ผู้ที่ต้องการหลีกเลี่ยงผลิตภัณฑ์จากนมด้วยเหตุผลด้านจริยธรรม (เช่น ผู้ที่รับประทานวีแกน) หรือกังวลเรื่องสุขภาพจากฮอร์โมนในนมสัตว์ สามารถเลือกใช้ทางเลือกจากพืชอย่างกะทิได้ การทำโยเกิร์ตจากนมพืชมีความซับซ้อนทางเทคนิคมากกว่า เพราะไม่มีแหล่งน้ำตาลตามธรรมชาติ (แลคโตส) ซึ่งแบคทีเรียใช้เป็นแหล่งพลังงาน

ข้อดีและความท้าทาย

ข้อดีของผลิตภัณฑ์จากพืชคือไม่มีฮอร์โมนเหมือนที่พบในนมวัว อย่างไรก็ตาม หลายคนรายงานว่าการหมักด้วยนมจากพืชมักไม่ค่อยได้ผลอย่างสม่ำเสมอ โดยเฉพาะกะทิมักแยกชั้นระหว่างการหมัก ทั้งส่วนที่เป็นน้ำและส่วนที่เป็นไขมัน ซึ่งอาจส่งผลต่อเนื้อสัมผัสและรสชาติ

สูตรที่ใช้เจลาตินหรือเพกทินบางครั้งให้ผลดีกว่า แต่ผลลัพธ์ยังไม่แน่นอน ทางเลือกที่น่าสนใจคือการใช้กัมกัวร์ ซึ่งไม่เพียงช่วยให้ได้เนื้อสัมผัสครีมตามต้องการ แต่ยังทำหน้าที่เป็นใยอาหารพรีไบโอติกสำหรับไมโครไบโอมด้วย

สูตร: โยเกิร์ตกะทิผสมกัมกัวร์

สูตรพื้นฐานนี้ช่วยให้หมักโยเกิร์ตจากกะทิได้สำเร็จ และสามารถเริ่มหมักด้วยสายพันธุ์แบคทีเรียที่เลือกได้ เช่น L. reuteri หรือหัวเชื้อจากชุดก่อนหน้า

ส่วนผสม

• กะทิ 1 กระป๋อง (ประมาณ 400 มล.) (ไม่มีสารเติมแต่ง เช่น แซนแทนกัมหรือเจลแลนกัม แต่ใช้กัมกัวร์ได้)
• น้ำตาล (ซูโครส) 1 ช้อนโต๊ะ
• แป้งมันฝรั่งดิบ 1 ช้อนโต๊ะ
• กัมกัวร์ ¾ ช้อนชา (ห้ามใช้ชนิดที่ผ่านการไฮโดรไลซ์บางส่วน!)
• หัวเชื้อแบคทีเรียตามที่เลือก (เช่น ผงจากแคปซูล L. reuteri ที่มี CFU อย่างน้อย 5 พันล้าน)
  หรือ โยเกิร์ต 2 ช้อนโต๊ะจากชุดก่อนหน้า

การเตรียม

1. การให้ความร้อน
   อุ่นกะทิในหม้อใบเล็กด้วยไฟกลางจนถึงอุณหภูมิประมาณ 82°C (180°F) และคงอุณหภูมินี้ไว้ 1 นาที
2. คนแป้งลงไป
   ผสมน้ำตาลกับแป้งมันฝรั่ง โดยคนไปด้วย จากนั้นยกลงจากเตา
3. ผสมกัมกัวร์ให้เข้ากัน
   หลังจากปล่อยให้เย็นประมาณ 5 นาที ให้คนกัมกัวร์ลงไป จากนั้นปั่นด้วยเครื่องปั่นมือถือหรือเครื่องปั่นตั้งโต๊ะอย่างน้อย 1 นาที เพื่อให้ได้เนื้อสัมผัสที่เนียนและข้นสม่ำเสมอ (คล้ายครีม)
4. ปล่อยให้เย็น
   ปล่อยให้ส่วนผสมเย็นลงจนถึงอุณหภูมิห้อง
5. ใส่แบคทีเรีย
   คนหัวเชื้อโพรไบโอติกลงไปเบาๆ (อย่าปั่น)
6. การหมัก
   เทส่วนผสมลงในภาชนะแก้ว แล้วหมักเป็นเวลา 48 ชั่วโมงที่อุณหภูมิประมาณ 37°C (99°F)

ทำไมต้องใช้กัมกัวร์?

กัมกัวร์เป็นใยอาหารธรรมชาติที่ได้จากถั่วกัวร์ ประกอบด้วยโมเลกุลน้ำตาลกาแลกโทสและแมนโนสเป็นหลัก (กาแลกโตแมนแนน) และทำหน้าที่เป็นใยอาหารพรีไบโอติกที่หมักโดยแบคทีเรียชนิดดีในลำไส้ เช่น เปลี่ยนเป็นกรดไขมันสายสั้นอย่างบิวทีเรตและโพรพิโอเนต

ประโยชน์ของกัวร์กัม:

• ช่วยให้เนื้อโยเกิร์ตคงตัว: ป้องกันการแยกชั้นของไขมันและน้ำ
• ฤทธิ์พรีไบโอติก: ส่งเสริมการเจริญเติบโตของแบคทีเรียสายพันธุ์ที่มีประโยชน์ เช่น Bifidobacterium, Ruminococcus และ Clostridium butyricum
• ปรับสมดุลไมโครไบโอมให้ดีขึ้น: ช่วยผู้ที่มีภาวะลำไส้แปรปรวนหรือถ่ายเหลว
• เพิ่มประสิทธิภาพของยาปฏิชีวนะ: งานศึกษาพบว่าอัตราความสำเร็จในการรักษา SIBO (ภาวะแบคทีเรียในลำไส้เล็กเจริญเติบโตมากเกินไป) สูงขึ้น 25%

สำคัญ: อย่าใช้กัวร์กัมชนิดไฮโดรไลซ์บางส่วน เพราะไม่ทำให้เกิดเจลและไม่เหมาะสำหรับทำโยเกิร์ต

เหตุผลที่เราแนะนำให้ใช้ 3–4 แคปซูลต่อชุด

สำหรับการหมักครั้งแรกด้วย Limosilactobacillus reuteri เราแนะนำให้ใช้ 3 ถึง 4 แคปซูล (15 ถึง 20 พันล้าน CFU) ต่อชุด

ปริมาณนี้อ้างอิงตามคำแนะนำของ Dr. William Davis ซึ่งระบุในหนังสือ “Super Gut” (2022) ว่าต้องใช้เชื้อเริ่มต้นอย่างน้อย 5 พันล้านหน่วยก่อโคโลนี (CFU) เพื่อให้การหมักสำเร็จ การใช้เชื้อเริ่มต้นในปริมาณที่สูงกว่า คือประมาณ 15 ถึง 20 พันล้าน CFU ได้ผลเป็นพิเศษ

ที่มา: L. reuteri เพิ่มจำนวนเป็นสองเท่าประมาณทุก 3 ชั่วโมงภายใต้สภาวะที่เหมาะสม ในช่วงเวลาหมักตามปกติ 36 ชั่วโมง จะเพิ่มจำนวนเป็นสองเท่าประมาณ 12 ครั้ง ซึ่งหมายความว่าในทางทฤษฎี แม้ใช้เชื้อเริ่มต้นในปริมาณค่อนข้างน้อย ก็อาจเพียงพอที่จะผลิตแบคทีเรียจำนวนมากได้

อย่างไรก็ตาม ในทางปฏิบัติ การใช้ปริมาณเริ่มต้นสูงถือว่าเหมาะสมด้วยเหตุผลหลายประการ ประการแรก ช่วยเพิ่มโอกาสที่ L. reuteri จะตั้งตัวและเติบโตอย่างรวดเร็ว จนมีจำนวนเหนือกว่าเชื้อแปลกปลอมที่อาจมีอยู่ ประการที่สอง ความเข้มข้นเริ่มต้นที่สูงช่วยให้ค่า pH ลดลงอย่างสม่ำเสมอ ซึ่งทำให้สภาวะการหมักตามปกติมีความเสถียร ประการที่สาม ความหนาแน่นเริ่มต้นที่ต่ำเกินไปอาจทำให้การหมักเริ่มช้าหรือแบคทีเรียเติบโตไม่เพียงพอ

ดังนั้น เราแนะนำให้ใช้ 3 ถึง 4 แคปซูลสำหรับชุดแรก เพื่อให้มั่นใจว่าเริ่มต้นการเพาะโยเกิร์ตได้อย่างน่าเชื่อถือ หลังจากหมักสำเร็จครั้งแรก โดยทั่วไปสามารถใช้โยเกิร์ตเป็นหัวเชื้อซ้ำได้สูงสุด 20 ครั้ง ก่อนแนะนำให้ใช้หัวเชื้อใหม่

เริ่มใหม่หลังหมักครบ 20 ครั้ง

คำถามที่พบบ่อยเกี่ยวกับการหมักด้วย Limosilactobacillus reuteri คือ เราสามารถนำโยเกิร์ตหัวเชื้อกลับมาใช้ซ้ำได้กี่ครั้งก่อนต้องใช้หัวเชื้อใหม่? Dr. William Davis แนะนำในหนังสือ Super Gut (2022) ว่าไม่ควรเพาะโยเกิร์ต Reuteri ต่อเนื่องเกิน 20 รุ่น (หรือชุด) แต่ตัวเลขนี้มีหลักฐานทางวิทยาศาสตร์รองรับหรือไม่? และทำไมต้อง 20 พอดี ไม่ใช่ 10 หรือ 50?

การหมักต่อเชื้อเกิดขึ้นอย่างไร?

เมื่อทำโยเกิร์ต Reuteri แล้ว คุณสามารถใช้เป็นหัวเชื้อสำหรับทำชุดถัดไปได้ วิธีนี้จะถ่ายโอนแบคทีเรียมีชีวิตจากผลิตภัณฑ์ที่ทำเสร็จแล้วไปยังสารละลายสารอาหารใหม่ (เช่น นม หรือนมจากพืช) เป็นวิธีที่เป็นมิตรต่อสิ่งแวดล้อม ช่วยประหยัดแคปซูล และนิยมทำกันในทางปฏิบัติ

อย่างไรก็ตาม การนำเชื้อจากรุ่นก่อนกลับมาใช้ซ้ำอย่างต่อเนื่องนำไปสู่ปัญหาทางชีววิทยา:
การเปลี่ยนแปลงของจุลินทรีย์

การเปลี่ยนแปลงของจุลินทรีย์ – เชื้อเลี้ยงเปลี่ยนแปลงอย่างไร

ทุกครั้งที่ถ่ายเชื้อ องค์ประกอบและคุณสมบัติของเชื้อแบคทีเรียอาจค่อย ๆ เปลี่ยนแปลงได้ สาเหตุมีดังนี้:

• การกลายพันธุ์ที่เกิดขึ้นเองระหว่างการแบ่งเซลล์ (โดยเฉพาะเมื่อมีการแบ่งตัวหมุนเวียนสูงในสภาพแวดล้อมที่อบอุ่น)
• การคัดเลือกประชากรย่อยบางกลุ่ม (เช่น กลุ่มที่เติบโตเร็วกว่าเข้ามาแทนที่กลุ่มที่เติบโตช้ากว่า)
• การปนเปื้อนจากจุลินทรีย์ที่ไม่พึงประสงค์ในสิ่งแวดล้อม (เช่น เชื้อโรคในอากาศ หรือจุลินทรีย์ในครัว)
• การปรับตัวที่เกี่ยวข้องกับสารอาหาร (แบคทีเรีย “ปรับตัว” ให้เข้ากับน้ำนมบางชนิดและเปลี่ยนแปลงกระบวนการเผาผลาญ)

ผลที่ได้คือ หลังผ่านไปหลายรุ่น ไม่อาจรับประกันได้อีกต่อไปว่าโยเกิร์ตจะยังมีแบคทีเรียชนิดเดิม หรืออย่างน้อยก็มีสายพันธุ์ที่ออกฤทธิ์ทางสรีรวิทยาเหมือนเดิมกับตอนเริ่มต้น

เหตุใด ดร. Davis จึงแนะนำให้เพาะต่อ 20 รุ่น

เดิมที ดร. William Davis พัฒนาวิธีทำโยเกิร์ต L. reuteri สำหรับผู้อ่านของเขา เพื่อให้ได้รับประโยชน์ต่อสุขภาพบางประการโดยเฉพาะ (เช่น การหลั่งออกซิโทซิน การนอนหลับที่ดีขึ้น และผิวพรรณที่ดีขึ้น) ในบริบทนี้ เขาเขียนว่าวิธีดังกล่าว “ใช้ได้ผลอย่างสม่ำเสมอประมาณ 20 รุ่น” ก่อนที่จะต้องใช้หัวเชื้อใหม่จากแคปซูล (Davis, 2022)

เรื่องนี้ไม่ได้อ้างอิงจากการทดสอบในห้องปฏิบัติการอย่างเป็นระบบ แต่เป็นประสบการณ์จริงจากการหมักและรายงานจากชุมชนของเขา

“หลังจากนำมาใช้ซ้ำประมาณ 20 รุ่น โยเกิร์ตของคุณอาจมีประสิทธิภาพลดลง หรือหมักได้ไม่สม่ำเสมอ เมื่อถึงจุดนั้น ให้ใช้แคปซูลใหม่เป็นหัวเชื้อ”
— Super Gut, ดร. William Davis, 2022

เขาให้เหตุผลในเชิงปฏิบัติว่า หลังจากนำเชื้อมาเพาะต่อประมาณ 20 ครั้ง ความเสี่ยงที่การเปลี่ยนแปลงที่ไม่พึงประสงค์จะเริ่มสังเกตเห็นได้จะเพิ่มขึ้น เช่น เนื้อสัมผัสเหลวลง กลิ่นเปลี่ยนไป หรือผลดีต่อสุขภาพลดลง

มีงานวิจัยทางวิทยาศาสตร์เกี่ยวกับเรื่องนี้หรือไม่?

ยังไม่มีงานวิจัยทางวิทยาศาสตร์ที่เจาะจงศึกษาโยเกิร์ต L. reuteri ผ่านการหมัก 20 รอบ อย่างไรก็ตาม มีงานวิจัยเกี่ยวกับความคงตัวของแบคทีเรียกรดแลกติกเมื่อถ่ายเชื้อผ่านหลายรุ่น:

• ในจุลชีววิทยาอาหาร เป็นที่ยอมรับกันโดยทั่วไปว่า การเปลี่ยนแปลงทางพันธุกรรมอาจเกิดขึ้นหลังผ่านไป 5–30 รุ่น โดยขึ้นอยู่กับชนิด อุณหภูมิ อาหารเลี้ยงเชื้อ และสุขอนามัย (Giraffa et al., 2008)
• การศึกษาการหมักด้วย Lactobacillus delbrueckii และ Streptococcus thermophilus แสดงให้เห็นว่า หลังผ่านไปประมาณ 10–25 รุ่น ประสิทธิภาพการหมักอาจเปลี่ยนแปลง (เช่น ความเป็นกรดลดลง หรือกลิ่นเปลี่ยนไป) (O’Sullivan et al., 2002)
• สำหรับ Lactobacillus reuteri โดยเฉพาะ เป็นที่ทราบกันว่าคุณสมบัติของโพรไบโอติกอาจแตกต่างกันมาก ขึ้นอยู่กับชนิดย่อย สายพันธุ์ที่แยกได้ และสภาพแวดล้อม (Walter et al., 2011)

ข้อมูลเหล่านี้ชี้ว่า การเพาะต่อ 20 รุ่นเป็นแนวทางที่รอบคอบและเหมาะสมในการรักษาความสมบูรณ์ของเชื้อเลี้ยง โดยเฉพาะหากคุณต้องการคงผลดีต่อสุขภาพไว้ (เช่น การผลิตออกซิโทซิน)

สรุป: การหมักต่อเนื่อง 20 รุ่นเป็นทางสายกลางที่เหมาะสำหรับการใช้งานจริง

ไม่สามารถระบุได้อย่างแน่ชัดทางวิทยาศาสตร์ว่า 20 คือ "จำนวนมหัศจรรย์" หรือไม่ แต่:

• โดยปกติไม่จำเป็นต้องทิ้งเชื้อก่อนครบ 10 รอบ
• การหมักต่อเนื่องเกิน 30 รอบเพิ่มความเสี่ยงต่อการกลายพันธุ์หรือการปนเปื้อน
• การหมัก 20 รอบเทียบเท่ากับการใช้งานประมาณ 5–10 เดือน (ขึ้นอยู่กับปริมาณที่บริโภค) ซึ่งเป็นช่วงเวลาที่เหมาะสำหรับการเริ่มต้นใหม่

คำแนะนำสำหรับการใช้งานจริง:

หลังจากหมักโยเกิร์ตครบ 20 รอบ ควรเริ่มวิธีใหม่โดยใช้เชื้อเริ่มต้นสดจากแคปซูล โดยเฉพาะหากต้องการใช้ L. reuteri เป็น “สายพันธุ์ที่สูญหายไป” สำหรับไมโครไบโอมของคุณโดยเฉพาะ

วิธีหมัก L. reuteri ในน้ำผลไม้:

น้ำผลไม้โพรไบโอติกเป็นทางเลือกแทนโยเกิร์ต L. reuteri

ไม่จำเป็นต้องหมัก L. reuteri ในนมเสมอไป

น้ำผลไม้ยังสามารถเป็นอาหารเลี้ยงเชื้อจากพืชสำหรับแบคทีเรียโพรไบโอติกได้ด้วย

งานวิจัยทางวิทยาศาสตร์แสดงให้เห็นว่า สามารถใช้ L. reuteri กับน้ำผลไม้ชนิดต่างๆ ได้ รวมถึงน้ำแอปเปิล น้ำส้ม น้ำสับปะรด และน้ำมะม่วง

นี่เป็นทางเลือกที่น่าสนใจแทนโยเกิร์ต L. reuteriสูตรดั้งเดิมของเรา โดยเฉพาะสำหรับผู้ที่สนใจการหมักโพรไบโอติกที่ปราศจากผลิตภัณฑ์นม

น้ำผลไม้โพรไบโอติกเหมือนกับคอมบูชาหรือไม่?

ไม่ใช่

แม้เครื่องดื่มทั้งสองชนิดจะผลิตด้วยกระบวนการหมัก แต่ น้ำผลไม้หมักด้วย L. reuteri ไม่ใช่คอมบูชา

โดยทั่วไป คอมบูชาหมักด้วยวัฒนธรรมผสมของแบคทีเรียและยีสต์

สำหรับน้ำผลไม้โพรไบโอติก L. reuteri จะเติม L. reuteri ลงไปโดยเจตนาเพื่อใช้เป็นเชื้อเริ่มต้นในการหมัก

อย่างไรก็ตาม หลักการพื้นฐานคล้ายกัน:

จุลินทรีย์จะเผาผลาญส่วนประกอบต่างๆ ในน้ำผลไม้และเปลี่ยนผลิตภัณฑ์ดั้งเดิมระหว่างการหมัก

L. reuteri สามารถเผาผลาญน้ำตาลในน้ำผลไม้ได้หรือไม่?

L. reuteri อยู่ในกลุ่มแบคทีเรียกรดแลกติกและสามารถเผาผลาญคาร์โบไฮเดรตได้

น้ำผลไม้มีน้ำตาลตามธรรมชาติ ซึ่งสามารถใช้เป็นสารตั้งต้นสำหรับกระบวนการเมแทบอลิซึมของแบคทีเรียระหว่างการหมัก

งานวิจัยเกี่ยวกับการหมักน้ำผลไม้ด้วยแบคทีเรียกรดแลกติกแสดงให้เห็นว่า หลักการนี้ใช้ได้จริง

ระหว่างการหมัก อาจเกิดกรดอินทรีย์และเมแทบอไลต์อื่นๆ ซึ่งเปลี่ยนรสชาติ กลิ่น และองค์ประกอบของน้ำผลไม้ดั้งเดิม

มีการศึกษาน้ำผลไม้ชนิดใดบ้างที่หมักด้วย L. reuteri?

น้ำแอปเปิล

น้ำแอปเปิลเหมาะอย่างยิ่งสำหรับการหมักด้วย L. reuteri

ในการศึกษาทางวิทยาศาสตร์หนึ่ง มีการหมักน้ำแอปเปิลด้วย L. reuteri และวิเคราะห์หลังจาก 0, 6, 12, 18, 24 และ 30 ชั่วโมง

ภายใต้สภาวะที่ศึกษา พบว่าระยะเวลาหมักที่เหมาะสมที่สุดอยู่ที่ประมาณ 18 ชั่วโมง

การหมักส่งผลต่อองค์ประกอบของสารให้กลิ่น กรดอินทรีย์ และโพลีฟีนอลในน้ำแอปเปิล

อีกงานวิจัยหนึ่งแสดงให้เห็นว่า L. reuteri ยังคงมีชีวิตอยู่ได้ในน้ำแอปเปิลเช่นกัน

น้ำส้ม

มีการศึกษาน้ำส้มในฐานะตัวกลางสำหรับ L. reuteri เช่นกัน

งานวิจัยแสดงให้เห็นว่า L. reuteri ยังคงมีชีวิตอยู่ได้ในน้ำส้ม จึงอาจเป็นอีกทางเลือกที่น่าสนใจสำหรับใช้เป็นส่วนผสมพื้นฐานของเครื่องดื่มโพรไบโอติก

น้ำสับปะรด

เช่นเดียวกันกับน้ำสับปะรด

มีการแสดงให้เห็นด้วยว่า L. reuteri ยังคงมีชีวิตอยู่ได้ในน้ำสับปะรด

น้ำมะม่วง

มีการศึกษาทางวิทยาศาสตร์เกี่ยวกับการหมักน้ำมะม่วงด้วย L. reuteri โดยเฉพาะเช่นกัน

ระหว่างการหมัก นักวิจัยพบการเปลี่ยนแปลงของปริมาณน้ำตาลและองค์ประกอบของสารเมแทบอไลต์ในน้ำผลไม้

ผลการศึกษาเหล่านี้เป็นหลักฐานเพิ่มเติมว่าน้ำผลไม้สามารถใช้เป็นตัวกลางในการหมัก L. reuteri ได้

เหตุใดระยะเวลาหมักจึงสำคัญ

หากคุณทำโยเกิร์ต L. reuteri ของเรา อยู่แล้ว คุณจะทราบดีว่าอุณหภูมิที่คงที่และระยะเวลาหมักที่ถูกต้องมีความสำคัญเพียงใด

หลักการพื้นฐานเดียวกันนี้ใช้กับน้ำผลไม้ได้ แม้ว่าสภาวะที่เหมาะสมที่สุดอาจต่างจากการทำโยเกิร์ต

งานศึกษาน้ำแอปเปิลแสดงให้เห็นเรื่องนี้ได้ชัดเจนเป็นพิเศษ

นักวิจัยวิเคราะห์น้ำแอปเปิลหมักด้วย L. reuteri หลังหมักเป็นเวลา 0, 6, 12, 18, 24 และ 30 ชั่วโมง

ภายใต้สภาวะที่ศึกษา พบว่าระยะเวลาหมักประมาณ 18 ชั่วโมงเหมาะสมที่สุด

เรื่องนี้แสดงให้เห็นหลักการสำคัญข้อหนึ่ง:

การหมักนานขึ้นไม่ได้หมายความว่าจะหมักได้ดีขึ้นเสมอไป

ระยะเวลาหมักที่เหมาะสมที่สุดขึ้นอยู่กับแบคทีเรีย ตัวกลางในการหมัก อุณหภูมิ ค่า pH และสภาวะอื่นๆ

เชื้อ L. reuteri แต่ละสายพันธุ์อาจมีพฤติกรรมแตกต่างกันบ้าง ดังนั้นควรมองระยะเวลาหมักประมาณ 18 ชั่วโมงเป็นจุดเริ่มต้นที่ผ่านการศึกษาทางวิทยาศาสตร์แล้ว ไม่ใช่เวลาที่เหมาะสมที่สุดซึ่งรับประกันได้ในทุกสภาวะ

วิธีทำน้ำแอปเปิลหมักด้วย L. reuteri

สูตรต่อไปนี้นำผลการศึกษาทางวิทยาศาสตร์ที่มีอยู่เกี่ยวกับการหมัก L. reuteri ในน้ำผลไม้ มาปรับให้เป็นวิธีง่ายๆ สำหรับทดลองทำที่บ้าน

ส่วนผสมและอุปกรณ์สำหรับ 1 ลิตร

• น้ำแอปเปิลพาสเจอร์ไรซ์ 100% 1 ลิตร (ประมาณ 34 ออนซ์ของเหลว)

• แคปซูล L. reuteri 1 แคปซูล ซึ่งมี 5 พันล้าน CFU

• ภาชนะหมักที่สะอาดและมีพื้นที่ว่างด้านบนเพียงพอ

• แอร์ล็อกสำหรับการหมัก

• เครื่องทำโยเกิร์ตหรืออุปกรณ์อื่นที่สามารถรักษาอุณหภูมิไว้ที่ประมาณ 37°C / 99°F

การเลือกน้ำแอปเปิลที่เหมาะสม

ใช้น้ำแอปเปิลพาสเจอไรซ์ 100% ที่ไม่มีสารกันเสีย

ตรวจสอบรายการส่วนผสมก่อนซื้อน้ำผลไม้ทุกครั้ง

ที่สำคัญ ควรเลือกชนิดที่ไม่มีโพแทสเซียมซอร์เบตหรือโซเดียมเบนโซเอต

ดร. William Davis แนะนำให้ใช้น้ำผลไม้ที่ไม่มีสารกันเสียสำหรับการหมักน้ำผลไม้โดยเฉพาะ และระบุชัดเจนให้หลีกเลี่ยงโพแทสเซียมซอร์เบตและโซเดียมเบนโซเอต

เรื่องนี้สอดคล้องกับหลักจุลชีววิทยา:

มีการเติมสารกันเสียลงในอาหารก็เพื่อยับยั้งการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์โดยเฉพาะ

อย่างไรก็ตาม ระหว่างการหมัก เราต้องการให้เป็นไปในทางตรงกันข้าม กล่าวคือ ต้องการให้แบคทีเรียที่เติมลงไปยังคงทำงานทางเมแทบอลิซึมและเพิ่มจำนวน

ขั้นตอนที่ 1: เตรียมน้ำแอปเปิล

เปิดน้ำแอปเปิลพาสเจอไรซ์ภาชนะใหม่ แล้วเท 1 ลิตร ลงในภาชนะหมักที่ทำความสะอาดอย่างทั่วถึงแล้ว

เว้นที่ว่างด้านบนของภาชนะให้เพียงพอ

ขั้นตอนที่ 2: เติม L. reuteri

เปิดแคปซูล L. reuteri 1 แคปซูลที่มี 5 พันล้าน CFU แล้วเติมทั้งหมดลงในน้ำแอปเปิล 1 ลิตร

ผสมให้ทั่วเพื่อกระจายเชื้อเริ่มต้นให้ทั่วน้ำผลไม้

วิธีนี้ทำให้มีความเข้มข้นเริ่มต้นประมาณ 5 ล้าน CFU ต่อน้ำแอปเปิล 1 มิลลิลิตร

ขั้นตอนที่ 3: ใช้แอร์ล็อกสำหรับการหมัก

ห้ามหมักน้ำผลไม้ในภาชนะปิดมิดชิดและไม่มีอากาศเข้าออก

ระหว่างการหมักอาจเกิดก๊าซขึ้น ซึ่งอาจทำให้เกิดแรงดันสูงภายในภาชนะที่ปิดสนิท

ใช้แอร์ล็อกสำหรับการหมัก ซึ่งช่วยให้ก๊าซจากการหมักระบายออกได้ พร้อมช่วยป้องกันการปนเปื้อนจากสภาพแวดล้อมโดยรอบ

หลักการนี้ยังคุ้นเคยจากวิธีการหมักอื่น ๆ รวมถึงคอมบูชาและเครื่องดื่มหมักชนิดอื่น

ขั้นตอนที่ 4: หมักที่อุณหภูมิประมาณ 37°C / 99°F

โดยทั่วไปจะเพาะเลี้ยง L. reuteri ที่อุณหภูมิประมาณอุณหภูมิร่างกาย

ในทางปฏิบัติ ให้เริ่มจากรักษาน้ำแอปเปิลไว้ที่อุณหภูมิประมาณ 37°C / 99°F ตลอดการหมัก

การรักษาอุณหภูมิให้คงที่มากที่สุดเท่าที่จะทำได้เป็นสิ่งสำคัญ

ขั้นตอนที่ 5: หมักประมาณ 18 ชั่วโมง

สำหรับน้ำแอปเปิล ให้เริ่มหมักประมาณ 18 ชั่วโมง

คำแนะนำนี้อ้างอิงจากงานวิจัยทางวิทยาศาสตร์ ซึ่งวิเคราะห์น้ำแอปเปิลที่หมักด้วย L. reuteri หลังผ่านไป 0, 6, 12, 18, 24 และ 30 ชั่วโมง

ภายใต้สภาวะที่ศึกษา พบว่า ระยะเวลาการหมักที่เหมาะสมที่สุดคือประมาณ 18 ชั่วโมง

อย่างไรก็ตาม ไม่ควรถือว่า 18 ชั่วโมงเป็นระยะเวลาที่เหมาะสมที่สุดซึ่งรับประกันได้สำหรับเชื้อ L. reuteri ทุกชนิด

การหมักเกี่ยวข้องกับจุลินทรีย์ที่มีชีวิต และผลลัพธ์อาจแตกต่างกันไปตามเชื้อแบคทีเรีย น้ำผลไม้ จำนวนแบคทีเรียเริ่มต้น ค่า pH และสภาวะการหมัก

ขั้นตอนที่ 6: หยุดการหมักด้วยการแช่เย็น

เมื่อหมักเสร็จแล้ว ให้นำน้ำผลไม้เข้าตู้เย็นทันที

อุณหภูมิที่ลดลงอย่างมากจะทำให้กิจกรรมการเผาผลาญของแบคทีเรียช้าลงอย่างมาก และทำให้การหมักดำเนินต่อไปช้าลงด้วย

เก็บน้ำผลไม้โพรไบโอติกที่หมักเสร็จแล้วไว้ในตู้เย็น

จำเป็นต้องใช้อินนูลินหรือใยอาหารจากอะคาเซียหรือไม่?

ไม่จำเป็นเสมอไป

น้ำผลไม้ต่างจากนมตรงที่มีน้ำตาลตามธรรมชาติอยู่แล้วในปริมาณมาก ซึ่งแบคทีเรียสามารถนำไปใช้ในกระบวนการเผาผลาญได้

งานวิจัยเกี่ยวกับการหมักน้ำผลไม้ด้วย L. reuteri แสดงให้เห็นว่าการหมักเกิดขึ้นได้โดยไม่ต้องเติมอินนูลิน ซึ่งมักใช้ในการเตรียมโยเกิร์ต L. reuteri ของเรา

การเติมใยอาหารพรีไบโอติก เช่น อินนูลินหรือใยอาหารจากอะคาเซีย จะช่วยให้การหมักด้วยเชื้อ L. reuteri สายพันธุ์หนึ่งๆ ดีขึ้นอีกหรือไม่นั้น เป็นอีกประเด็นหนึ่งที่ต้องศึกษาเพิ่มเติม

เหตุใดผลลัพธ์ของการหมักจึงแตกต่างกันได้?

L. reuteri เป็นจุลินทรีย์ที่มีชีวิต

ความสำเร็จของการหมักขึ้นอยู่กับหลายปัจจัย เช่น อุณหภูมิ ระยะเวลาหมัก ความเข้มข้นเริ่มต้นของแบคทีเรีย ค่า pH และส่วนประกอบของน้ำผลไม้

ลักษณะการเผาผลาญของเชื้อ L. reuteri แต่ละสายพันธุ์อาจแตกต่างกันด้วย

อย่างไรก็ตาม งานวิจัยทางวิทยาศาสตร์แสดงให้เห็นหลักการพื้นฐานว่า น้ำผลไม้สามารถเป็นอาหารเลี้ยงเชื้อที่เหมาะสมสำหรับ L. reuteri และ L. reuteri สามารถยังมีชีวิตอยู่หรือหมักน้ำผลไม้ได้อย่างต่อเนื่องภายใต้สภาวะที่เหมาะสม

น้ำผลไม้ L. reuteri หรือโยเกิร์ต L. reuteri?

โยเกิร์ต L. reuteri ของเรายังคงเป็นวิธีการเตรียมที่ได้รับการยอมรับ ซึ่งอธิบายไว้ในคำแนะนำการหมักที่มีอยู่แล้ว

การหมักน้ำผลไม้เป็นอีกทางเลือกที่น่าสนใจ โดยเฉพาะสำหรับผู้ที่สนใจการหมักจากพืชหรือการหมักที่ไม่ใช้นม

งานวิจัยแสดงให้เห็นมากขึ้นเรื่อยๆ ว่า L. reuteri ไม่ได้จำกัดอยู่แค่การหมักแบบโยเกิร์ตเท่านั้น น้ำผลไม้ เช่น น้ำแอปเปิล ก็สามารถใช้เป็นอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับหมัก L. reuteri ได้เช่นกัน

ด้วยเหตุนี้ น้ำผลไม้โพรไบโอติกจึงเป็นอีกวิธีใหม่ที่น่าสนใจในการทดลองหมัก L. reuteri

ข้อควรทราบเกี่ยวกับการทนต่ออาหาร:

น้ำผลไม้หมักอาจทำให้ทนได้ยากกว่าโยเกิร์ต L. reuteri โดยเฉพาะในผู้ที่ไวต่อฟรุกโตส กรดในผลไม้ อาหารหมัก หรือ FODMAPs

การหมักไม่ได้ทำให้น้ำตาลที่มีอยู่ตามธรรมชาติในน้ำผลไม้หมดไปเสมอ

หากคุณกำลังลองดื่มน้ำผลไม้โพรไบโอติกเป็นครั้งแรก ให้เริ่มจากปริมาณน้อยๆ แล้วสังเกตว่าร่างกายของคุณทนได้แค่ไหน

ประโยชน์ที่ได้รับทุกวันจากโยเกิร์ต SIBO

ฟื้นฟูไมโครไบโอมด้วยสายพันธุ์ที่สูญหายไป - ด้วยโยเกิร์ตที่มี L. reuteri, L. gasseri และ B. coagulans

ไมโครไบโอมมีบทบาทสำคัญต่อสุขภาพของเรา โดยไม่เพียงส่งผลต่อการย่อยอาหาร แต่ยังส่งผลต่อระบบภูมิคุ้มกันและระบบประสาทลำไส้ ซึ่งเชื่อมโยงกับสมองอย่างใกล้ชิด (Foster et al., 2017) ความไม่สมดุลของการตั้งถิ่นฐานของจุลินทรีย์ โดยเฉพาะในลำไส้เล็ก อาจนำไปสู่อาการผิดปกติได้หลากหลาย

ระบบประสาทลำไส้ (ENS) ซึ่งมักเรียกว่า "สมองลำไส้" เป็นระบบประสาทอิสระในทางเดินอาหาร ประกอบด้วยเซลล์ประสาทกว่า 100 ล้านเซลล์ที่ทอดยาวไปตามผนังลำไส้ทั้งหมด ซึ่งมีจำนวนมากกว่าในไขสันหลัง ENS ควบคุมกระบวนการสำคัญหลายอย่างได้ด้วยตัวเอง ได้แก่ การเคลื่อนไหวของลำไส้ (เพอริสตัลซิส) การหลั่งน้ำย่อย การไหลเวียนของเลือดไปยังเยื่อเมือก และแม้แต่การประสานการทำงานบางส่วนของระบบภูมิคุ้มกันในลำไส้ (Furness, 2012)

แม้จะทำงานได้อย่างเป็นอิสระ แต่สมองลำไส้เชื่อมโยงกับสมองอย่างใกล้ชิดผ่านทางเดินประสาท โดยเฉพาะเส้นประสาทเวกัส การเชื่อมโยงนี้เรียกว่าแกนลำไส้-สมอง ซึ่งอธิบายได้ว่าเหตุใดความเครียดทางจิตใจ เช่น ความเครียด จึงส่งผลต่อการย่อยอาหาร และเหตุใดไมโครไบโอมที่ผิดสมดุลจึงส่งผลต่ออารมณ์ การนอนหลับ และสมาธิด้วย (Cryan et al., 2019)

SIBO (ภาวะแบคทีเรียในลำไส้เล็กเจริญเติบโตมากเกินไป) หมายถึงการที่แบคทีเรียในลำไส้เล็กเพิ่มจำนวนมากเกินไป หรือมีแบคทีเรียชนิดที่ไม่เหมาะสมมากเกินไป จุลินทรีย์เหล่านี้รบกวนการดูดซึมสารอาหารและทำให้เกิดอาการต่างๆ เช่น ท้องอืด ปวดท้อง ภาวะขาดสารอาหาร และภาวะไม่ทนต่ออาหาร (Rezaie et al., 2020)

สาเหตุทั่วไปของ SIBO คือการเคลื่อนไหวของลำไส้ช้าลงหรือผิดปกติ การเคลื่อนไหวของลำไส้ที่เรียกเช่นนี้มีหน้าที่ลำเลียงก้อนอาหารผ่านทางเดินอาหารด้วยการเคลื่อนไหวเป็นคลื่น

หากกลไกชำระล้างตามธรรมชาตินี้ ซึ่งเรียกว่าการเคลื่อนไหวของลำไส้ถูกรบกวน การเคลื่อนผ่านของสิ่งที่อยู่ในลำไส้จะช้าลง ทำให้แบคทีเรียสะสมและเพิ่มจำนวนในลำไส้เล็กมากกว่าปกติ จนนำไปสู่ภาวะแบคทีเรียเจริญเติบโตมากเกินไป การเพิ่มจำนวนของแบคทีเรียอย่างผิดปกตินี้เป็นลักษณะเฉพาะของ SIBO และอาจทำให้เกิดอาการผิดปกติในการย่อยอาหารและการอักเสบ (Rezaie et al., 2020)

การรักษาด้วยยาปฏิชีวนะซ้ำๆ ความเครียดเรื้อรัง หรือการรับประทานอาหารที่มีกากใยน้อย ก็อาจทำให้สมดุลของไมโครไบโอมเสียไปมากขึ้นได้เช่นกัน ไม่ใช่แค่ความเครียดเรื้อรังเท่านั้น แต่ความเครียดระยะสั้นก็ทำให้ลำไส้ทำงานน้อยกว่าปกติ โดยเฉพาะในสถานการณ์ที่ตึงเครียด ร่างกายจะหลั่งฮอร์โมนความเครียด เช่น อะดรีนาลีนและคอร์ติซอล ซึ่งส่งผลต่อระบบประสาทอัตโนมัติและกระตุ้นการตอบสนองแบบ “ปิดการทำงาน”

ภาวะนี้ทำให้การเคลื่อนไหวของลำไส้ลดลง เลือดไหลเวียนไปยังลำไส้น้อยลง และกิจกรรมการย่อยอาหารช้าลง เพื่อสงวนพลังงานไว้สำหรับการ “สู้หรือหนี” การยับยั้งการทำงานของลำไส้ชั่วคราวนี้เอื้อต่อการสะสมของแบคทีเรียในลำไส้เล็ก และอาจส่งเสริมให้เกิดภาวะแบคทีเรียเจริญเติบโตมากเกินไป (Konturek et al., 2011)

วิธีหนึ่งที่ช่วยปรับสมดุลจุลินทรีย์ในลำไส้เล็กได้อย่างตรงจุด คือการทำโยเกิร์ตโปรไบโอติกด้วยสายพันธุ์แบคทีเรียเฉพาะ ได้แก่ Limosilactobacillus reuteri, Lactobacillus gasseri และ Bacillus coagulans, จุลินทรีย์โปรไบโอติก 3 ชนิดที่มีหลักฐานบ่งชี้ถึงศักยภาพในการจัดการปัญหาที่เกี่ยวข้องกับ SIBO ซึ่งรวมถึงการยับยั้งเชื้อก่อโรค การปรับการทำงานของระบบภูมิคุ้มกัน และการปกป้องเยื่อบุลำไส้ (Savino et al., 2010; Park et al., 2018; Hun, 2009)

ในบทนี้ คุณจะได้เรียนรู้วิธีทำโยเกิร์ต SIBO ที่เรียกกันนี้ได้ง่ายๆ ที่บ้าน คำแนะนำทีละขั้นตอนที่ให้มาจะแสดงวิธีหมักจุลินทรีย์ 3 สายพันธุ์ที่คัดเลือกมาโดยเฉพาะ เพื่อทำเป็นอาหารโปรไบโอติกที่เหมาะสำหรับผู้ที่แพ้แลคโตสด้วย

เสริมสร้างไมโครไบโอม - บทบาทของ Lost Species

ไมโครไบโอมของมนุษย์กำลังเปลี่ยนแปลงอย่างลึกซึ้ง วิถีชีวิตสมัยใหม่ของเรา ซึ่งมีลักษณะเด่นคือการบริโภคอาหารแปรรูปสูง มาตรฐานสุขอนามัยที่เข้มงวด การผ่าคลอด ระยะเวลาให้นมบุตรที่สั้นลง และการใช้ยาปฏิชีวนะบ่อยครั้ง ทำให้จุลินทรีย์บางสายพันธุ์ที่เคยเป็นส่วนหนึ่งของระบบนิเวศภายในร่างกายเรามานานนับพันปี แทบไม่พบในลำไส้ของมนุษย์ในปัจจุบัน

จุลินทรีย์เหล่านี้เรียกว่า “Lost Species” หรือ “สายพันธุ์ที่สูญหายไป”

การศึกษาทางวิทยาศาสตร์ชี้ว่า การสูญเสียสายพันธุ์เหล่านี้เชื่อมโยงกับปัญหาสุขภาพสมัยใหม่ที่เพิ่มขึ้น เช่น โรคภูมิแพ้ โรคแพ้ภูมิตนเอง การอักเสบเรื้อรัง ความผิดปกติทางจิต และโรคเกี่ยวกับระบบเผาผลาญ (Blaser, 2014)

การฟื้นฟูไมโครไบโอมด้วยการจัดหา “สายพันธุ์ที่สูญหายไป” อย่างตรงจุด เปิดมุมมองใหม่ในการป้องกันและรักษาโรคจากวิถีชีวิตสมัยใหม่หลายชนิด การนำจุลินทรีย์โบราณเหล่านี้กลับมาอยู่ในร่างกาย เช่น ผ่านโปรไบโอติกสูตรพิเศษ อาหารหมัก หรือแม้แต่การปลูกถ่ายอุจจาระ เป็นแนวทางที่มีแนวโน้มช่วยเสริมความหลากหลายของจุลินทรีย์ และเพิ่มความสามารถในการปรับตัวของร่างกาย

จุลินทรีย์ 3 สายพันธุ์สำคัญ พร้อมการดูแลไมโครไบโอมอย่างมีประสิทธิภาพ

ชุดเริ่มต้นประกอบด้วย Limosilactobacillus reuteri ซึ่งเป็นสายพันธุ์ที่สูญหายอย่างชัดเจน กล่าวคือเป็นจุลินทรีย์ชนิดหนึ่งที่มักลดจำนวนลงอย่างมากหรือเกือบหายไปจากระบบนิเวศของจุลินทรีย์ในลำไส้ของชาวตะวันตกยุคใหม่

Lactobacillus gasseri พบได้น้อยกว่าในอดีต และพบได้น้อยในไมโครไบโอมของชาวตะวันตกจำนวนมากหากไม่ได้รับจากภายนอก แต่ไม่จัดเป็นสายพันธุ์ที่สูญหายแบบดั้งเดิม

Bacillus coagulans ไม่ใช่จุลินทรีย์ในลำไส้โดยตรง หากแต่เป็นจุลินทรีย์จากดินที่สร้างสปอร์ ซึ่งพบในลำไส้เป็นครั้งคราวเท่านั้น ไม่ใช่สายพันธุ์ที่สูญหาย แต่เป็นสายพันธุ์หายากที่เข้ามาจากภายนอกและมีคุณสมบัติพิเศษในการช่วยให้ลำไส้มีความสมดุล

การผสมผสานนี้จึงรวมสายพันธุ์ที่สูญหายแบบดั้งเดิมเข้ากับสายพันธุ์หายากแต่มีหลักฐานรองรับ เพื่อช่วยดูแลไมโครไบโอมของคุณอย่างตรงจุดและรอบด้าน

Limosilactobacillus reuteri – จุลินทรีย์สำคัญต่อสุขภาพ

Limosilactobacillus reuteri คืออะไร?

Limosilactobacillus reuteri (ชื่อเดิม: Lactobacillus reuteri) เป็นแบคทีเรียโพรไบโอติกที่เดิมเป็นส่วนหนึ่งของไมโครไบโอมในมนุษย์ โดยเฉพาะในทารกที่กินนมแม่และผู้คนในวัฒนธรรมดั้งเดิม อย่างไรก็ตาม ในสังคมอุตสาหกรรมสมัยใหม่ แบคทีเรียชนิดนี้ได้สูญหายไปเป็นส่วนใหญ่ ซึ่งสันนิษฐานว่าเกิดจากการผ่าคลอด การใช้ยาปฏิชีวนะ สุขอนามัยที่มากเกินไป และอาหารที่มีสารอาหารไม่เพียงพอ (Blaser, 2014)

L. reuteri มีคุณสมบัติที่โดดเด่น คือสามารถมีปฏิสัมพันธ์โดยตรงกับระบบภูมิคุ้มกัน สมดุลฮอร์โมน และแม้แต่ระบบประสาทส่วนกลาง งานวิจัยจำนวนมากแสดงให้เห็นว่าจุลินทรีย์ชนิดนี้ในไมโครไบโอมอาจส่งผลดีต่อการย่อยอาหาร การนอนหลับ การควบคุมความเครียด การเติบโตของกล้ามเนื้อ และสุขภาวะทางอารมณ์

สรุปคุณสมบัติสำคัญของ Limosilactobacillus reuteri

• ส่งเสริมไมโครไบโอมที่แข็งแรง
• กระตุ้นการผลิตออกซิโทซินผ่านแกนลำไส้-สมอง
• ควบคุมระบบภูมิคุ้มกันและมีฤทธิ์ต้านการอักเสบ
• ช่วยให้นอนหลับลึกขึ้น
• ส่งเสริมความต้องการทางเพศและสมรรถภาพทางเพศ
• ส่งเสริมการเติบโตของกล้ามเนื้อ
• ช่วยลดไขมันในช่องท้อง
• ช่วยให้อารมณ์คงที่
• ปรับสภาพผิวให้ดีขึ้น
• เพิ่มสมรรถภาพทางกาย

Lactobacillus gasseri – พันธมิตรอเนกประสงค์สำหรับลำไส้และระบบเผาผลาญ

Lactobacillus gasseri คืออะไร?

Lactobacillus gasseri เป็นแบคทีเรียโพรไบโอติกที่พบได้ตามธรรมชาติในลำไส้ของมนุษย์ แต่พบได้น้อยกว่าในสังคมอุตสาหกรรมสมัยใหม่เมื่อเทียบกับในอดีต (Kleerebezem & Vaughan, 2009) แบคทีเรียชนิดนี้อยู่ในกลุ่มแบคทีเรียกรดแลกติก และมีบทบาทสำคัญในการรักษาสมดุลของจุลินทรีย์ในลำไส้ให้แข็งแรง

L. gasseri เป็นที่รู้จักว่ามีผลดีหลากหลายด้านต่อการย่อยอาหาร ระบบเผาผลาญ และระบบภูมิคุ้มกัน แม้จะไม่จัดเป็น “สายพันธุ์ที่สูญหาย” แบบดั้งเดิม แต่ปัจจุบันพบแบคทีเรียชนิดนี้ในลำไส้ของผู้คนจำนวนมากลดลงอย่างมีนัยสำคัญ

เหตุใด L. gasseri จึงมีความสำคัญ?

Lactobacillus gasseri ช่วยส่งเสริมสุขภาพได้หลายด้าน โดยเฉพาะระบบเผาผลาญ การทำงานของลำไส้ และระบบภูมิคุ้มกัน ความสามารถในการลดเนื้อเยื่อไขมันและยับยั้งการอักเสบทำให้แบคทีเรียชนิดนี้เป็นโพรไบโอติกสำคัญสำหรับผู้ที่มีน้ำหนักเกินหรือมีปัญหาด้านระบบเผาผลาญ แม้ปัจจุบันจะพบ L. gasseri น้อยกว่าในกลุ่มประชากรดั้งเดิม แต่ก็ไม่ใช่ตัวแทนทั่วไปของ “สายพันธุ์ที่สูญหายไป” และยังเป็นส่วนเสริมที่มีคุณค่าต่อไมโครไบโอมที่แข็งแรง

สรุปคุณสมบัติสำคัญของ Lactobacillus gasseri:

• ช่วยรักษาสมดุลของไมโครไบโอมในลำไส้
• ส่งเสริมการผลิตกรดแลกติกเพื่อควบคุมค่า pH
• ช่วยสลายไขมันหน้าท้องและไขมันในช่องท้อง
• ช่วยสนับสนุนระบบเผาผลาญ
• มีส่วนช่วยลดการอักเสบ
• อาจช่วยปรับการทำงานของระบบภูมิคุ้มกัน
• ส่งเสริมสุขภาพระบบย่อยอาหาร
• ช่วยเสริมสร้างสุขภาวะโดยรวม

Bacillus coagulans – ตัวช่วยทรงพลังเพื่อสุขภาพลำไส้และระบบภูมิคุ้มกัน

Bacillus coagulans คืออะไร?

Bacillus coagulans เป็นแบคทีเรียโพรไบโอติกที่สร้างสปอร์ ซึ่งมีคุณสมบัติเด่นด้านความทนทานต่อความร้อน กรด และการเก็บรักษา (Elshaghabee et al., 2017) B. coagulans แตกต่างจากโพรไบโอติกชนิดอื่นหลายชนิดตรงที่สามารถผ่านกระเพาะอาหารได้ดีเป็นพิเศษ และเจริญเติบโตในลำไส้ได้อย่างแข็งขัน ด้วยคุณสมบัติเหล่านี้ จึงมักนำมาใช้ในผลิตภัณฑ์เสริมอาหารและอาหารหมัก

พบ B. coagulans ในอาหารดั้งเดิม เช่น ผักหมักและผลิตภัณฑ์บางชนิดของเอเชีย โดยมีส่วนสำคัญต่อเสถียรภาพและสุขภาพของไมโครไบโอม

แบคทีเรียสร้างสปอร์ – คนดูแลสวนของไมโครไบโอม

แบคทีเรียโพรไบโอติกที่สร้างสปอร์ เช่น Bacillus coagulans ได้รับการขนานนามว่าเป็น “คนดูแลสวน” ของลำไส้ในการวิจัยไมโครไบโอม คำเรียกนี้มาจากความสามารถพิเศษในการควบคุมระบบนิเวศของจุลินทรีย์อย่างแข็งขันและรักษาสมดุลที่ดีไว้ จุดเด่นสำคัญคือความสามารถในการสร้างสปอร์ เมื่อเผชิญกับสภาพแวดล้อมที่ไม่เอื้ออำนวย จุลินทรีย์เหล่านี้จะเปลี่ยนไปอยู่ในรูปแบบพักตัวที่ทนทานสูง ซึ่งเรียกว่าเอนโดสปอร์

สปอร์นี้ไม่ใช่รูปแบบสำหรับการสืบพันธุ์ แต่เป็นกลไกเพื่อความอยู่รอด ในรูปของสปอร์ สารพันธุกรรมจะได้รับการปกป้องอยู่ภายในเปลือกหนาหลายชั้น ทำให้แบคทีเรียทนต่ออุณหภูมิสุดขั้ว ความแห้ง รังสียูวี แอลกอฮอล์ ภาวะขาดออกซิเจน และโดยเฉพาะกรดในกระเพาะอาหารได้

แบคทีเรียที่สร้างสปอร์ เช่น B. coagulans จึงผ่านทางเดินอาหารไปได้โดยแทบไม่เสียหาย มีเพียงในลำไส้เล็กเท่านั้นที่แบคทีเรียจะกลับมาเจริญและทำงานได้อีกครั้งภายใต้สภาวะที่เหมาะสม เช่น ความชื้น อุณหภูมิ และเกลือน้ำดี (Setlow, 2014; Elshaghabee et al., 2017)

แบคทีเรียชนิดที่ไม่สร้างสปอร์แตกต่างอย่างไร?

ในทางตรงกันข้าม แบคทีเรียชนิดที่ไม่สร้างสปอร์ เช่น Limosilactobacillus reuteri หรือ Bifidobacterium infantis มีบทบาทเฉพาะทางมากขึ้นในการสื่อสารระหว่างระบบประสาทและระบบต่อมไร้ท่อ โดยมีอิทธิพลต่อเส้นทางการส่งสัญญาณระหว่างลำไส้ ระบบประสาท และระบบฮอร์โมน

แบคทีเรียโปรไบโอติกที่ไม่สร้างสปอร์ เช่น Limosilactobacillus reuteri และ Bifidobacterium infantis มีส่วนร่วมอย่างแข็งขันในการควบคุมระบบประสาทและต่อมไร้ท่อ ซึ่งหมายถึงการปรับสมดุลอย่างละเอียดระหว่างระบบประสาทกับระบบฮอร์โมน จุลินทรีย์เหล่านี้ผลิตสารตั้งต้นของสารสื่อประสาท เช่น ทริปโตเฟน (สารตั้งต้นของเซโรโทนิน) หรือ GABA (กรดแกมมา-อะมิโนบิวทิริก) และกระตุ้นการหลั่งสารสื่อกลางสำคัญ เช่น เซโรโทนินและออกซิโทซิน ผ่านตัวรับในลำไส้ รวมถึงทางเส้นประสาทเวกัส

ด้วยวิธีนี้ แบคทีเรียเหล่านี้จึงส่งผลต่อกระบวนการทางอารมณ์และฮอร์โมน เช่น อารมณ์ การจัดการความเครียด คุณภาพการนอนหลับ และการสร้างความผูกพันทางสังคม ผลกระทบต่อสิ่งที่เรียกว่าแกนลำไส้-สมองมีหลักฐานรองรับอย่างชัดเจน และกำลังได้รับการศึกษาถึงการนำไปใช้ในการรักษามากขึ้น โดยเฉพาะที่เกี่ยวข้องกับโรคที่สัมพันธ์กับความเครียดและอาการทางจิตใจที่แสดงออกทางร่างกาย (Buffington et al., 2016; O’Mahony et al., 2015)

แบคทีเรียที่สร้างสปอร์ เช่น Bacillus coagulans ออกฤทธิ์เฉพาะที่ในลำไส้เป็นหลัก โดยช่วยส่งเสริมความสมดุลของจุลินทรีย์ในลำไส้และเสริมความแข็งแรงให้กับหน้าที่ปกป้องของเยื่อบุลำไส้ จึงช่วยเสริมการทำงานของแนวกั้นลำไส้และควบคุมจุลินทรีย์ที่เป็นอันตราย

ต่างจากแบคทีเรียที่ไม่สร้างสปอร์ แบคทีเรียเหล่านี้ส่งผลโดยตรงต่อการทำงานของร่างกายในระดับสูงหรือการสื่อสารระหว่างลำไส้กับสมองได้เพียงจำกัด โดยหลักแล้วจะออกฤทธิ์ในสภาพแวดล้อมระดับจุลภาคของลำไส้ (Elshaghabee et al., 2017; Mazanko et al., 2018)

แบคทีเรียในลำไส้ชนิดอื่นที่สร้างสปอร์

นอกจาก Bacillus coagulans แล้ว แบคทีเรียสายพันธุ์ต่อไปนี้ยังสร้างสปอร์ได้:

• Bacillus subtilis – จุลินทรีย์แห่งปี 2023 ซึ่งพบในนัตโตะ ช่วยให้ไมโครไบโอมมีเสถียรภาพและผลิตเอนไซม์
• Clostridium butyricum – ผลิตบิวทิเรตและมีฤทธิ์ต้านการอักเสบ
• Bacillus clausii – มีหลักฐานยืนยันว่าช่วยรักษาอาการท้องเสียหลังใช้ยาปฏิชีวนะได้ผล
• Bacillus indicus – ผลิตแคโรทีนอยด์ที่มีคุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระ

แบคทีเรียเหล่านี้ยังทนทานสูงและช่วยควบคุมการทำงานของภูมิคุ้มกัน ความสมบูรณ์ของแนวกั้นลำไส้ และความสมดุลของจุลินทรีย์ (Cutting, 2011; Elshaghabee et al., 2017)

เหตุใด Bacillus coagulans จึงมีความสำคัญ?

ด้วยความทนทานสูงและประสิทธิภาพในการเป็นโปรไบโอติก Bacillus coagulans จึงเป็นตัวช่วยสำคัญต่อสุขภาพลำไส้ โดยเฉพาะในผู้ที่มีระบบย่อยอาหารบอบบางหรือมีปัญหาเกี่ยวกับลำไส้เรื้อรัง ความสามารถเฉพาะตัวในการคงประสิทธิภาพในรูปสปอร์แม้ในสภาวะที่ไม่เอื้ออำนวย ช่วยเสริมการทำงานของโปรไบโอติกสายพันธุ์อื่น

สรุปลักษณะสำคัญของ Bacillus coagulans:

• ช่วยฟื้นฟูไมโครไบโอมให้มีสุขภาพดี
• ผลิตกรดแลกติกเพื่อควบคุมค่า pH ในลำไส้
• ช่วยส่งเสริมการย่อยอาหารและการดูดซึมสารอาหาร
• ปรับการทำงานของระบบภูมิคุ้มกันและลดการอักเสบ
• บรรเทาอาการลำไส้แปรปรวนและปัญหาการย่อยอาหารอื่น ๆ
• ทนต่อการเดินทางผ่านกระเพาะอาหารได้ด้วยการสร้างสปอร์
• ทนต่อความร้อนและกรด ซึ่งช่วยให้เก็บรักษาได้ง่ายขึ้น
• ช่วยให้จุลินทรีย์ในลำไส้คงสมดุลด้วยการสร้างสปอร์
• ส่งเสริมการควบคุมภูมิคุ้มกัน
• ช่วยลดการอักเสบ
• เพิ่มความทนทานต่อปัจจัยก่อความเครียด
• มีผลดีต่อเยื่อบุลำไส้

แหล่งที่มา:

• https://innercircle.drdavisinfinitehealth.com/probiotic_yogurt_recipes
• Foster, J. A., Rinaman, L., & Cryan, J. F. (2017). ความเครียดกับแกนลำไส้-สมอง: การควบคุมโดยไมโครไบโอม Neurobiology of Stress, 7, 124–136.
• Furness, J. B. (2012). ระบบประสาทลำไส้และประสาทวิทยาระบบทางเดินอาหาร Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology, 9(5), 286–294.
• Cryan, J. F., O’Riordan, K. J., Cowan, C. S. M., Sandhu, K. V., Bastiaanssen, T. F. S., Boehme, M., ... & Dinan, T. G. (2019). แกนจุลินทรีย์-ลำไส้-สมอง Physiological Reviews, 99(4), 1877–2013.
• Rezaie, A., Buresi, M., Lembo, A., Lin, H., McCallum, R., Rao, S., ... & Pimentel, M. (2020). การตรวจลมหายใจโดยใช้ไฮโดรเจนและมีเทนในโรคทางเดินอาหาร: ฉันทามติของอเมริกาเหนือ The American Journal of Gastroenterology, 115(5), 662–681.
• Rezaie, A., Buresi, M., Lembo, A., Lin, H. C., McCallum, R., Rao, S., ... & Pimentel, M. (2020). การตรวจลมหายใจโดยใช้ไฮโดรเจนและมีเทนในโรคทางเดินอาหาร: ฉันทามติของอเมริกาเหนือ The American Journal of Gastroenterology, 115(5), 675–684. https://doi.org/10.14309/ajg.0000000000000544
• Konturek, P. C., Brzozowski, T., & Konturek, S. J. (2011). ความเครียดกับลำไส้: พยาธิสรีรวิทยา ผลกระทบทางคลินิก แนวทางการวินิจฉัย และทางเลือกในการรักษา Journal of Physiology and Pharmacology, 62(6), 591–599.
• Savino, F., Cordisco, L., Tarasco, V., Locatelli, E., Di Gioia, D., & Matteuzzi, D. (2010). Lactobacillus reuteri DSM 17938 สำหรับอาการโคลิกในทารก: การทดลองแบบสุ่ม ปกปิดสองฝ่าย และมีกลุ่มควบคุมที่ได้รับยาหลอก Pediatrics, 126(3), e526–e533.
• Park, J. H., Lee, J. H., & Shin, S. C. (2018). ผลการรักษาของ Lactobacillus gasseri ต่ออาการลำไส้ใหญ่อักเสบเรื้อรังและจุลินทรีย์ในลำไส้ Journal of Microbiology and Biotechnology, 28(12), 1970–1979.
• Hun, L. (2009). Bacillus coagulans ช่วยบรรเทาอาการปวดท้องและท้องอืดในผู้ป่วย IBS ได้อย่างมีนัยสำคัญ Postgraduate Medicine, 121(2), 119–124.
• Kadooka, Y., Sato, M., Imaizumi, K. และคณะ (2010). การควบคุมไขมันสะสมบริเวณหน้าท้องด้วยโพรไบโอติก (Lactobacillus gasseri SBT2055) ในผู้ใหญ่ที่มีแนวโน้มเป็นโรคอ้วน: การทดลองแบบสุ่มที่มีกลุ่มควบคุม European Journal of Clinical Nutrition, 64(6), 636-643.
• Kleerebezem, M., & Vaughan, E. E. (2009). แลคโตบาซิลลัสและบิฟิโดแบคทีเรียในโพรไบโอติกและลำไส้: แนวทางระดับโมเลกุลเพื่อศึกษาความหลากหลายและกิจกรรม. Annual Review of Microbiology, 63, 269–290.
• Park, S., Bae, J.-H., & Kim, J. (2013). ผลของ Lactobacillus gasseri BNR17 ต่อน้ำหนักตัวและมวลเนื้อเยื่อไขมันในหนูที่เป็นโรคอ้วนจากอาหาร. Journal of Microbiology and Biotechnology, 23(3), 344-349.
• Kim, H. S., Lee, B. J., & Lee, J. S. (2015). Lactobacillus gasseri ส่งเสริมการทำงานของแนวกั้นลำไส้ในเซลล์ Caco-2. Journal of Microbiology, 53(3), 169-176.
• Matsumoto, M., Inoue, R., Tsukahara, T. และคณะ (2008). ผลกระทบของจุลชีพในลำไส้ต่อเมแทบอโลมในช่องลำไส้. Scientific Reports, 8, 7800.
• Mayer, E. A., Tillisch, K., & Gupta, A. (2014). แกนลำไส้/สมองและจุลชีพ. The Journal of Clinical Investigation, 124(10), 4382–4390.
• Elshaghabee, F. M. F., Rokana, N., Gulhane, R. D., Sharma, C., & Panwar, H. (2017). โพรไบโอติก Bacillus: Bacillus coagulans ซึ่งเป็นตัวเลือกที่มีศักยภาพสำหรับอาหารฟังก์ชันและเภสัชภัณฑ์. Frontiers in Microbiology, 8, 1490.
• Shah, N., Yadav, S., Singh, A., & Prajapati, J. B. (2019). ประสิทธิผลของ Bacillus coagulans ในการส่งเสริมสุขภาพลำไส้: บททบทวน. Journal of Applied Microbiology, 126(4), 1224-1233.
• Ghane, M., Azadbakht, M., & Salehi-Abargouei, A. (2020). ผลของการเสริม Bacillus coagulans ต่อกิจกรรมของเอนไซม์ย่อยอาหารและจุลชีพในลำไส้: การทบทวนอย่างเป็นระบบ. Probiotics and Antimicrobial Proteins, 12, 1252–1261.
• Majeed, M., Nagabhushanam, K., & Arshad, M. (2018). ผลด้านการปรับภูมิคุ้มกันของ Bacillus coagulans ต่อสุขภาพและโรค. Microbial Pathogenesis, 118, 101-105.
• Khatri, S., Mishra, R., & Jain, S. (2019). Bacillus coagulans สำหรับรักษากลุ่มอาการลำไส้แปรปรวน: การทดลองแบบสุ่มมีกลุ่มควบคุม. Clinical and Experimental Gastroenterology, 12, 69–76.
• Buffington, S. A. และคณะ (2016). การฟื้นฟูจุลินทรีย์กลับคืนช่วยแก้ไขความบกพร่องด้านสังคมและไซแนปส์ในลูกหลานที่เกิดจากอาหารของมารดา. Cell, 165(7), 1762–1775.
• Cutting, S. M. (2011). โพรไบโอติก Bacillus. Food Microbiology, 28(2), 214–220.
• Elshaghabee, F. M. F. และคณะ (2017). Bacillus ในฐานะโพรไบโอติกที่มีศักยภาพ: สถานะ ข้อกังวล และมุมมองในอนาคต. Frontiers in Microbiology, 8, 1490.
• Ghelardi, E. และคณะ (2015). ผลกระทบของสปอร์ Bacillus clausii ต่อองค์ประกอบและโปรไฟล์เมแทบอลิซึมของจุลินทรีย์ในลำไส้. Frontiers in Microbiology, 6, 1390.
• Hong, H. A. และคณะ (2005). การใช้แบคทีเรียที่สร้างสปอร์เป็นโพรไบโอติก. FEMS Microbiology Reviews, 29(4), 813–835.
• Mazanko, M. S. และคณะ (2018). คุณสมบัติโพรไบโอติกของแบคทีเรีย Bacillus. Veterinaria i Kormlenie, (4), 30–35.
• O'Mahony, S. M. และคณะ (2015). ไมโครไบโอมกับโรคในวัยเด็ก: มุ่งเน้นแกนสมอง-ลำไส้. Birth Defects Research Part C, 105(4), 296–313.
• Setlow, P. (2014). การงอกของสปอร์ของแบคทีเรียสกุล Bacillus: สิ่งที่เรารู้และไม่รู้. Journal of Bacteriology, 196(7), 1297–1305.
• Buffington SA และคณะ (2016): การฟื้นฟูจุลินทรีย์ช่วยแก้ไขความบกพร่องด้านสังคมและไซแนปส์ในลูกที่เกิดจากอาหารของแม่. Cell 165(7): 1762–1775.
• O’Mahony SM และคณะ (2015): ไมโครไบโอมกับโรคในวัยเด็ก: มุ่งเน้นแกนสมอง-ลำไส้. Birth Defects Research Part C 105(4): 296–313.
• Elshaghabee FMF, Rokana N, Gulhane RD, Sharma C, Panwar H. โพรไบโอติก Bacillus: ภาพรวม. Front Microbiol. 2017;8:1490. doi:10.3389/fmicb.2017.01490
• Mazanko MS, Morozov IV, Klimenko NS, Babenko VA. ฤทธิ์ปรับภูมิคุ้มกันของสปอร์ Bacillus coagulans ในลำไส้. Microbiology. 2018;87(3):336–343. doi:10.1134/S0026261718030148

แหล่งข้อมูลทางวิทยาศาสตร์ "วิธีหมัก L. reuteri ในน้ำแอปเปิล: น้ำโพรไบโอติกเป็นทางเลือกแทนโยเกิร์ต L. reuteri"

Ji G. และคณะ (2023). อิทธิพลของการหมักด้วยแบคทีเรียกรดแลกติกต่อสารให้กลิ่นและส่วนประกอบเชิงหน้าที่ของน้ำแอปเปิล. Food Bioscience, 51, 102337.

หมักน้ำแอปเปิลด้วย L. reuteri และวิเคราะห์ในช่วงเวลาการหมักที่แตกต่างกัน ภายใต้เงื่อนไขการทดลอง พบว่าประมาณ 18 ชั่วโมงเป็นระยะเวลาการหมักที่เหมาะสมที่สุด

Perricone M. และคณะ (2014). ความมีชีวิตของ Lactobacillus reuteri ในน้ำผลไม้. Journal of Functional Foods, 10, 421–426.

การศึกษานี้ตรวจสอบ L. reuteri ในน้ำผลไม้หลายชนิด รวมถึงน้ำแอปเปิล น้ำส้ม และน้ำสับปะรด

Guo W. และคณะ (2025). การปรับปรุงคุณลักษณะทางกายภาพเคมี ฤทธิ์ทางชีวภาพ รสชาติ และโปรไฟล์เมแทบอลิซึมของน้ำมะม่วงที่หมักด้วย Limosilactobacillus reuteri. International Journal of Food Microbiology.

การศึกษานี้ตรวจสอบการหมักน้ำมะม่วงด้วย L. reuteri และบันทึกการเปลี่ยนแปลงของปริมาณน้ำตาล เมแทบอไลต์ และคุณลักษณะอื่นๆ ระหว่างการหมัก